Время работы закрытых облучателей в помещении лаборатории

Обеззараживание воздуха в лабораториях медорганизаций.

Все помещения «заразной» зоны лаборатории должны быть оборудованы бактерицидными облучателями для обеззараживания воздуха и поверхностей. В помещениях «чистой» зоны применение технологий обеззараживание воздушной среды также является обязательным в соответствии с требованиями санитарного законодательства, которое предписывает медработникам выполнять обеззараживание воздуха во всех категориях помещений в рамках проведения генеральных уборок. 

Правильное использование медтехники и оборудования позволяет эффективно снижать микробную обсемененность воздушной среды.

В настоящей статье будут рассмотрены два метода обеззараживания воздуха, которые могут применяться в лабораторных подразделениях медорганизаций:

– воздействие ультрафиолетовым излучением с помощью бактерицидных облучателей;

– воздействие аэрозолями дезинфицирующих средств с помощью специальной распыливающей аппаратуры (генераторов аэрозолей).

Ультрафиолетовое бактерицидное облучение.

Обеззараживание воздуха – ультрафиолетовое бактерицидное облучение воздушной среды помещений предполагает использование ультрафиолетовых бактерицидных установок и облучателей. Эксплуатацию облучателей осуществляют в соответствии с Руководством Р 3.5.1904-04 «Использование ультрафиолетового бактерицидного излучения для обеззараживания воздуха в помещениях» и прилагающимися к оборудованию инструкциями.

Выделяют бактерицидные облучатели закрытого, открытого и комбинированного типов. Открытые и комбинированные облучатели предназначены для процесса обеззараживания помещений только в отсутствии людей или при кратковременном их пребывании в помещении при условии использования эффективных средств индивидуальной защиты. Это обусловлено тем, что у облучателей открытого типа прямой бактерицидный поток охватывает широкую зону в окружающем пространстве.

В свою очередь облучатели комбинированного типа снабжены двумя бактерицидными лампами, которые разделены между собой экраном, чтобы поток от одной лампы направлялся наружу в нижнюю зону помещения, а от второй – соответственно в верхнюю.

У облучателей закрытого типа (рециркуляторов) бактерицидный поток от ламп, расположенных в закрытом корпусе, не имеет выхода наружу, что позволяет безопасно применять подобное оборудование в присутствии людей. 

При эксплуатации рециркуляторов важно учитывать, что бактерицидный поток будет распределяется лишь в ограниченном замкнутом пространстве, не имея выхода наружу, а обеззараживание воздуха будет осуществляться в процессе его прокачки через вентиляционные отверстия прибора. В связи с этим облучатели закрытого типа необходимо размещать в помещении по ходу основных потоков воздуха на высоте не менее двух метров от пола.

В зависимости от конструкции облучателя воздушный поток может обеспечиваться естественной конвекцией или принудительно при помощи специально встроенного в оборудование вентилятора.

В конструкции рециркуляторов для фильтрации входного воздушного потока может быть предусмотрена установка воздушного фильтра, который, как правило, не является обязательным элементом устройства и устанавливается для защиты медицинского персонала и пациентов от воздействия пыли.

Для эффективной очистки воздуха фильтры необходимо регулярно менять. Периодичность замены указывается в паспорте или инструкции по эксплуатации рециркулятора.  

В настоящее время в медицинских организациях стали применяться импульсные ксеноновые ультрафиолетовые установки, которые имеют ряд преимуществ перед традиционными бактерицидными облучателями. Технология предполагает облучение ультрафиолетовым излучением сплошного спектра с очень высокой интенсивностью, что позволяет обеспечивать эффективность обеззараживания воздуха в помещениях на 99,9 % и выше. Еще одним преимуществом импульсных ксеноновых ультрафиолетовых установок является короткое время экспозиции, как правило, не превышающее 5 минут. 

Ультрафиолетовые бактерицидные облучатели могут быть стационарными (потолочными, настенными) и передвижными. Количество стационарных облучателей, устанавливаемых в конкретном помещении, определяется его габаритами (объемом).

Информация о максимальном объеме помещений, который способен эффективно обеззараживать конкретный бактерицидный облучатель, указывается в паспорте или инструкции по применению оборудования. 

Для оценки бактерицидной эффективности ультрафиолетового облучения воздушной среды помещений в качестве санитарно-показательного микроорганизма принимается золотистый стафилококк. В клинико-диагностических лабораториях бактерицидная эффективность должна составлять не менее 95 %, в бактериологических лабораториях – не менее 99 %. Сведения о бактерицидной эффективности отражаются в паспорте (инструкции) к конкретной модели бактерицидного облучателя.

Пыль, скапливающаяся на поверхности ультрафиолетовых бактерицидных ламп в облучателях необходимо регулярно удалять, поскольку она может значительно снижать бактерицидную эффективность. Периодичность и способ удаления пыли указывается в паспорте или инструкции по эксплуатации конкретной модели облучателя. Осуществлять очистку ламп от пыли можно только при условии отключения прибора от электросети. 

Режим эксплуатации и продолжительность сеанса обеззараживания воздуха напрямую зависит от типа применяемого оборудования. Традиционные бактерицидные облучатели открытого и комбинированного типов могут использоваться в повторно-кратковременном режиме, при котором облучатели нужно включать на 15-30 минут каждые 2 часа в течение рабочей смены. Для закрытых облучателей (рециркуляторов) минимальная продолжительность сеанса облучения составляет 1 час.

Оптимально, если в помещениях с постоянным пребыванием людей закрытые облучатели функционируют в течение всего рабочего времени. 

Поскольку ультрафиолетовые бактерицидные лампы имеют ограниченный срок службы, по истечении которого необходимо производить их замену, сведения о работе бактерицидных облучателей нужно фиксировать в журналах регистрации и контроля бактерицидных установок. 

Пример. Журнал регистрации и контроля бактерицидных установок

Наименование и габариты помещения, номер и место расположения бактерицидной установки	Аналитическая №1 клинико-диагностической лаборатории площадь 25м2, высота стен 2,75 м, бактерицидная установка №3
Номер и дата акта ввода ультрафиолетовой бактерицидной установки в эксплуатацию	Акт № 6 от 21.10.2018 г.
Тип ультрафиолетовой бактерицидной установки	Облучатель закрытого типа (рециркулятор), «Название модели»
Наличие средств индивидуальной защиты (лицевые маски, очки, перчатки)	Не требуются
Срок замены ламп (отработавших срок службы)	Срок службы ламп – 9000 часов. Замена производится в ближайший рабочий день по истечении данного срока.

Суммарное количество отработанных часов бактерицидной лампой по месяцам

Месяц, год	Количество часов
…	…
Январь 2020 г.	7200
Февраль 2020 г.	7400
Март 2020 г.	7600
…	…

Ежедневный учет работы ультрафиолетовой бактерицидной установки

Ежедневный контроль времени работы оборудования и регистрация данных в журналах необходимы даже в том случае, если бактерицидный облучатель снабжен цифровым счетчиком для фиксации отработанного времени источников излучения.

Отработавшие свой ресурс или вышедшие из строя ультрафиолетовые бактерицидные лампы относятся к медицинским отходам класса Г (токсикологически опасным). Их собирают в промаркированные емкости любого цвета, кроме желтого и красного, с плотно прилегающими крышками и хранят в специально выделенных подсобных помещениях медицинской организации. Вывоз и обезвреживание отходов класса Г осуществляется специализированными компаниями, имеющими лицензию на данный вид деятельности. 

Обеззараживание воздуха. Воздействие аэрозолями дезсредств (аэрозольная дезинфекция).

Воздействие аэрозолями дезсредств (аэрозольная дезинфекция) как метод обеззараживания воздуха может применяться в лабораториях медицинских организаций в рамках выполнения генеральных уборок, а также при ликвидации биологических аварий.

В основу аэрозольной дезинфекции положен принцип преобразования жидкого дезинфектанта в состояние мелкодисперсного аэрозоля с помощью специальной распыливающей аппаратуры (генераторов аэрозолей). 

Аэрозольная дезинфекция имеет целый ряд преимуществ, которые, прежде всего, заключаются в высокой эффективности дезинфекционной обработки помещений больших объемов, в том числе труднодоступных и удаленных мест за счет равномерного распределения дезинфектанта. При соблюдении технологии обработки не наблюдается повреждающее воздействие аэрозоля на объекты внешней среды, в том числе медицинское оборудование, мебель, покрытия стен, пола, потолков и т.д.. 

Требования, предъявляемые к оборудованию, применяемому для аэрозольной дезинфекции в медицинским организациях, изложены в МР 3.5.1.0103-15 «Методические рекомендации по применению метода аэрозольной дезинфекции в медицинских организациях».

Технические характеристики оборудования и скорость распыления дезинфектанта напрямую влияют на эффективность и безопасность обработки. 

В медицинских организациях для аэрозольного метода дезинфекции допускается использовать готовые к применению средства или концентраты, рабочие растворы которых относятся к IV классу малоопасных или III классу умеренно опасных химических соединений при введении в желудок и при нанесении на кожу. Как правило, в аэрозольном состоянии эти же средства относятся ко II классу высоко опасных или I классу чрезвычайно опасных химических соединений. В связи с этим аэрозольная дезинфекция должна осуществляться строго в отсутствие людей при соблюдении необходимых мер безопасности и применении средств индивидуальной защиты персоналом, участвующим в проведении обработки. 

Для обеззараживания воздуха аэрозольным методом предпочтение следует отдавать дезинфицирующим средствам с широким спектром антимикробного действия. Чаще всего в данных целях используются средства на основе перекиси водорода.

Читайте также мою статью о работе с медицинскими отходами.

Я была рада поделиться своим опытом. Более подробную информацию обо мне Вы можете узнать в моем профиле. Буду рада видеть Вас на моей страничке в Instagram, где я публикую свои статьи, рассказываю актуальную информацию о дезинфекции и санитарно-противоэпидемических мероприятиях.

---

Понравилась статья – поделитесь ей в социальных сетях. Делитесь вашим мнением и общайтесь в комментариях. Вы можете предложить тему для публикации в разделе Хочу статью и обменяться опытом в разделе Вопрос специалисту.

Если вы хотите поделиться вашим опытом, у вас есть полезный материал для публикации – напишите нам 3q@3quality.ru Любите социальные сети? Присоединяйтесь к команде единомышленников. FB Vk Insta

УТВЕРЖДАЮ
Начальник Управления
профилактической медицины
Минздравмедпрома России
Р.И.ХАЛИТОВ
28 февраля 1995 г. N 11-16/03-06

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ ПО ПРИМЕНЕНИЮ БАКТЕРИЦИДНЫХ ЛАМП ДЛЯ ОБЕЗЗАРАЖИВАНИЯ ВОЗДУХА И ПОВЕРХНОСТЕЙ В ПОМЕЩЕНИЯХ

ВВЕДЕНИЕ

Борьба с инфекционными заболеваниями всегда считалась актуальной задачей. Один из путей успешного решения этой задачи заключается в широком применении бактерицидных ламп. С момента появления в нашей стране первого документа по применению бактерицидных ламп прошло более 40 лет. За прошедший период существенно обновился ассортимент бактерицидных ламп и облучательных приборов, проведены многочисленные микробиологические исследования значений бактерицидных экспозиций (доз) для достижения необходимого уровня бактерицидной эффективности с различными видами микроорганизмов при их облучении излучением с длиной волны 254, а также разработаны промышленные образцы бактерицидных облучателей.

Принимая решение о выпуске новой редакции Методических указаний, коллектив авторов руководствовался целью использовать накопленный опыт применения бактерицидных ламп и создать документ, отражающий современные требования и позволяющий существенно расширить масштабы их использования.

Из многочисленных областей применения бактерицидных ламп Методические указания охватывают только обеззараживание воздуха и поверхностей в помещениях, как один из наиболее действенных методов борьбы с болезнетворными микроорганизмами. Важно отметить, что применение бактерицидных ламп требует строгого выполнения мер безопасности, исключающих вредное воздействие на человека ультрафиолетового излучения, озона и паров ртути.

Методические указания рассчитаны на работников лечебных учреждений и органов санитарно — эпидемиологического надзора, а также лиц, занимающихся проектированием и эксплуатацией облучательных установок.

Методические указания являются базой для составления должностных инструкций по обслуживанию бактерицидных установок средним и младшим медицинским и техническим персоналом.

Они носят рекомендательный характер и позволят на более высоком уровне выполнять требования существующих нормативных документов, регламентирующих санитарные правила по содержанию различных лечебных, детских, бытовых и производственных помещений, оборудованных облучательными установками с бактерицидными лампами.

Пользователи бактерицидных облучателей должны учитывать, что УФ-излучение не может заменить санитарно — противоэпидемические мероприятия, а только дополнить их в качестве заключительного звена обработки помещения.

1. БАКТЕРИЦИДНОЕ ДЕЙСТВИЕ УЛЬТРАФИОЛЕТОВОГО ИЗЛУЧЕНИЯ

Ультрафиолетовое излучение, как известно, обладает широким диапазоном действия на микроорганизмы, включая бактерии, вирусы, споры и грибы. Однако, в связи с установившейся практикой, это явление называют бактерицидным действием, связанным с необратимым повреждением ДНК микроорганизмов и приводящим к гибели всех видов микроорганизмов. Спектральный состав ультрафиолетового излучения, вызывающий бактерицидное действие, лежит в интервале длин волн 205 — 315 нм. Зависимость бактерицидной эффективности в относительных единицах S(лямбда)отн. от длины волны излучения лямбда приведена в виде кривой на рис. 1 <*> и в таблице 1.

<*> Здесь и далее рисунки не приводятся.

Таблица 1

По этим данным максимум бактерицидного действия приходится на длину волны 265 нм согласно последним публикациям [4, 5], а не 254 нм, как читалось ранее [16]. В соответствии с этим в принятой системе эффективных единиц, оценивающих параметры ультрафиолетового излучения, за единицу бактерицидного потока принят поток излучения с длиной волны 265 нм, мощностью один ватт, а не длиной волны 254 нм, мощностью один бакт. Переходной коэффициент между этими системами единиц для максимумов бактерицидного действия равен 0,86, т.е. 1 бакт. = 0,86 ватт.

Бактерицидный поток источника ультрафиолетового излучения оценивается соотношением:

где:

S(лямбда)отн. — спектральная бактерицидная эффективность в относительных единицах;

Фе (лямбда) — спектральная плотность потока излучения, Вт/нм;

лямбда — длина волны излучения, нм.

Тогда другие величины и единицы можно определить с помощью следующих выражений.

Энергия бактерицидного излучения:

Wбк = Фл,бк x t, Дж,

где t — время действия излучения, с.

Бактерицидная облученность:

где S — площадь облучаемой поверхности, кв. м.

Бактерицидная экспозиция (в фотобиологии называется дозой):

Объемная плотность бактерицидной энергии:

где V — объем облучаемой воздушной среды, куб. м.

Микроорганизмы относятся к кумулятивным фотобиологическим приемникам, поэтому бактерицидная эффективность должна быть пропорциональна произведению облученности на время, т.е. определяться дозой. Однако нелинейная характеристика фотобиологического приемника ограничивает возможность широкой вариации значениями облученности и времени при одинаковой бактерицидной эффективности. В пределах допустимой ошибки можно менять соотношение облученности и времени в интервале 5 — 10кратных вариаций.

Количественная оценка бактерицидного действия Iбк характеризуется отношением числа погибших микроорганизмов Nк к их начальному числу Nн и оценивается в процентах.

Зависимость бактерицидной эффективности Iбк от дозы Нбк для микроорганизмов можно выразить с помощью уравнения:

Iбк = (а ln Нбк + в), %,

которое отражает известный закон Вебера — Фехнера, устанавливающий связь между физическим воздействием на биологический объект и его реакцией. Это уравнение можно преобразовать к виду:

Оно позволяет определить необходимое значение дозы, если задаться требуемым уровнем бактерицидной эффективности.

В приведенной таблице 2 указаны экспериментальные значения доз и бактерицидной эффективности для некоторых видов микроорганизмов при их облучении излучением с длиной волны 254 нм и значения вспомогательных коэффициентов «а» и «в» в вышеприведенных уравнениях.

Таблица 2

2. БАКТЕРИЦИДНЫЕ ЛАМПЫ

Электрические источники излучения, спектр которых содержит излучение диапазона длин волн 205 — 315 нм, предназначенные для целей обеззараживания, называют бактерицидными лампами. Наибольшее распространение, благодаря высокоэффективному преобразованию электрической энергии, получили разрядные ртутные лампы низкого давления, у которых в процессе электрического разряда в аргонортутной парогазовой смеси более 60% переходит в излучение линии 253,7 нм. Ртутные лампы высокого давления не рекомендуются для широкого применения из-за малой экономичности, т.к. у них доля излучения в указанном диапазоне составляет не более 10%, а срок службы примерно в 10 раз меньше, чем у ртутных ламп низкого давления.

Наряду с линией 253,7 нм, обладающей бактерицидным действием, в спектре излучения ртутного разряда низкого давления содержится линия 185 нм, которая в результате взаимодействия с молекулами кислорода образует озон в воздушной среде. У существующих бактерицидных ламп колба выполнена из увиолевого стекла, которое снижает, но полностью не исключает, выход линии 185 нм, что сопровождается образованием озона. Наличие озона в воздушной среде может привести при высоких концентрациях к опасным последствиям для здоровья человека вплоть до отравления со смертельным исходом.

В последнее время разработаны так называемые бактерицидные «безозонные» лампы. У таких ламп за счет изготовления колбы из специального материала (кварцевое стекло с покрытием) или ее конструкции исключается выход излучения линии 185 нм.

Конструктивно бактерицидные лампы представляют собой протяженную цилиндрическую трубку из кварцевого или увиолевого стекла. По обоим концам трубки впаяны ножки со смонтированными на них электродами, зацоколеванными с двух сторон двухштырьковыми цоколями.

Бактерицидные лампы питаются от электрической сети напряжением 220 В, с частотой переменного тока 50 Гц. Включение ламп в сеть производится через пускорегулирующие аппараты (ПРА), обеспечивающие необходимые режимы зажигания, разгорания и нормальной работы лампы и подавляющие высокочастотные электромагнитные колебания, создаваемые лампой, которые могли бы оказывать неблагоприятные влияния на чувствительные электронные приборы.

ПРА представляют собой отдельный блок, монтируемый внутри облучателя.

Основные технические и эксплуатационные параметры бактерицидных ламп: спектральное распределение потока излучения в области длин волн 205 — 315 нм; бактерицидный поток Фл,бк, Вт; бактерицидная отдача, равная отношению бактерицидного потока к мощности лампы:

— мощность лампы Рл, Вт;

— ток лампы Iл, А;

— напряжение на лампе Uл, В;

— номинальное напряжение сети Uс, В, и частота переменного тока f, Гц;

— полезный срок службы (суммарное время горения в часах до ухода основных параметров, определяющих целесообразность использования лампы, за установленные пределы, например, спад потока излучения до уровня ниже нормируемой величины (указываемой в ТУ)).

Особенностью бактерицидных ламп является существенная зависимость их электрических и излучательных параметров от колебаний напряжения сети. На рис. 2 приведена эта зависимость.

С ростом напряжения сети срок службы бактерицидных ламп уменьшается. Так, при повышении напряжения на 20% срок службы снижается до 50%. При падении напряжения сети более чем на 20% лампы начинают неустойчиво гореть и могут даже погаснуть.

В процессе работы ламп происходит уменьшение потока излучения. Особенно быстрое падение потока излучения отмечается за первые десятки часов горения, которое может достигать 10%. При дальнейшем горении скорость спада потока излучения замедляется. Этот процесс иллюстрируется графиком на рис. 3. На срок службы ламп влияет число включений. Каждое включение уменьшает общий срок службы лампы приблизительно на 2 часа.

Температура окружающего воздуха и его движение влияют на значение потока излучения ламп. Такая зависимость приведена на рис. 4. Необходимо отметить, что «безозонные» лампы практически не чувствительны к изменению температуры окружающего воздуха. С понижением температуры окружающего воздуха затрудняется зажигание ламп, а также увеличивается распыление электродов, что приводит к сокращению срока службы. При температурах, меньших 10 °C, значительное число ламп могут не зажигаться. Этот эффект усиливается при пониженном напряжении сети.

Электрические параметры бактерицидных ламп практически идентичны параметрам обычных люминесцентных ламп, поэтому они могут включаться в сеть переменного тока с ПРА, предназначенными для люминесцентных ламп аналогичной мощности.

В таблице 3 приведены основные параметры современных бактерицидных ламп низкого давления и ПРА.

Таблица 3

ОСНОВНЫЕ ТЕХНИЧЕСКИЕ ПАРАМЕТРЫ БАКТЕРИЦИДНЫХ РТУТНЫХ ЛАМП НИЗКОГО ДАВЛЕНИЯ

<*> Для «озонных» ламп содержание озона в воздухе в ТУ не нормируется, для «безозонных ламп» нормируется.

<**> Э — лампы с улучшенными экологическими параметрами.

<***> U-образной формы.

По виду токоограничивающего элемента существующие ПРА разделяются на две группы: электромагнитные и электронные. По способу зажигания ПРА делятся на стартерные и бесстартерные, по количеству подключаемых ламп — на одноламповые, двухламповые и многоламповые.

Некоторые схемы включения бактерицидных ртутных ламп низкого давления приведены в Приложении 1.

3. БАКТЕРИЦИДНЫЕ ОБЛУЧАТЕЛИ

Бактерицидный облучатель (БО) — это устройство, содержащее в качестве источника излучения бактерицидную лампу и предназначенное для обеззараживания воздушной среды или поверхностей в помещении.

БО состоит из корпуса, на котором установлены бактерицидная лампа, ПРА, отражатель, приспособления для крепления и монтажа. Конструкция БО должна обеспечивать соблюдение условий электрической, пожарной и механической безопасности, а также других требований, исключающих вредное воздействие на окружающую среду или человека. По условиям размещения бактерицидные облучатели подразделяются на облучатели, предназначенные для эксплуатации в стационарных помещениях и устанавливаемые на транспортных средствах, например в машинах скорой помощи. БО по месту расположения подразделяются на потолочные, подвесные, настенные и передвижные. По конструктивному исполнению они могут быть открытого типа, закрытого типа и комбинированными. БО открытого типа предназначены для облучения воздушной среды и поверхностей в помещениях прямым бактерицидным потоком в отсутствие людей путем перераспределения излучения лампы внутри больших телесных углов вплоть до 4пи. Бактерицидный облучатель закрытого типа предназначен для облучения воздуха и поверхностей в помещениях прямым и отраженным бактерицидным потоком как в отсутствие, так и в присутствии людей, отражатель которого должен направлять бактерицидный поток лампы в верхнюю полусферу так, чтобы никаких лучей, как непосредственно от лампы, так и отраженных от частей облучателя, не направлялось под углом, меньшим 5° вверх от горизонтальной плоскости, проходящей через лампу. Бактерицидные облучатели комбинированного типа совмещают в себе функции БО открытого и закрытого типов. Они имеют разные включаемые раздельно лампы для прямого и отраженного облучения либо подвижной отражатель, позволяющий использовать бактерицидный поток для прямого (в отсутствие людей) или для отраженного (в присутствии людей) облучения помещения.

Одним из типов закрытого БО являются рециркуляторы, предназначенные для обеззараживания воздуха путем его прохождения через закрытую камеру, внутренний объем которой облучается излучением бактерицидных ламп.

Скорость прохождения воздушного потока обеспечивается либо естественной конвекцией, либо принудительно с помощью вентилятора.

Передвижные БО, как правило, являются облучателями открытого типа.

Бактерицидные облучатели обладают рядом параметров и характеристик, которые позволяют оценить их потребительские свойства и определить наиболее эффективную область применения. К таковым относятся:

— тип облучателя, назначение и конструктивное исполнение;

— тип бактерицидной лампы и число ламп;

— напряжение сети Uс (В) и частота переменного тока f (Гц);

— потребляемая вольтамперная мощность Ра (V x А), равная а произведению тока сети Iс (А) на напряжение сети Uс (В);

— потребляемая активная мощность Ра (Вт), равная суммарной мощности ламп и потерь в ПРА;

— бактерицидный поток Фо,бк (Вт), излучаемый облучателем в пространстве;

— коэффициент полезного действия (КПД) эта о, равный отношению бактерицидного потока облучателя к суммарному бактерицидному потоку ламп Фл,бк:

— бактерицидная облученность Ео,бк (Вт/кв. м) на расстоянии 1 м от облучателя;

— производительность Qо (куб. м/ч), равная отношению объема воздушной среды Vо (куб. м) к времени облучения tв (ч), необходимого для достижения заданного уровня бактерицидной эффективности Iбк (%) для определенного вида микроорганизмов:

В таблице 4 приведены основные технические параметры и характеристики промышленных бактерицидных облучателей, а в таблице 5 — излучательные и экономические параметры.

Таблица 4

ОСНОВНЫЕ ТЕХНИЧЕСКИЕ ПАРАМЕТРЫ И ХАРАКТЕРИСТИКИ БАКТЕРИЦИДНЫХ ОБЛУЧАТЕЛЕЙ

Таблица 5

ОСНОВНЫЕ ИЗЛУЧАТЕЛЬНЫЕ И ЭКОНОМИЧЕСКИЕ ПАРАМЕТРЫ ПРОМЫШЛЕННЫХ БАКТЕРИЦИДНЫХ ОБЛУЧАТЕЛЕЙ

<*> Определить производительность Qо при любом другом значении бактерицидной эффективности Iбк можно из соотношения:

<**> Коэффициент, зависящий от конструктивного выполнения облучателя.

<***> На расстоянии 0,15 м от облучателя.

4. МЕТОДЫ ИЗМЕРЕНИЯ БАКТЕРИЦИДНОГО ИЗЛУЧЕНИЯ. ИЗМЕРИТЕЛЬНАЯ АППАРАТУРА

Высокая биологическая активность бактерицидного излучения требует строгого контроля параметров бактерицидных ламп, бактерицидных облучательных приборов и облучательных установок как на стадии их разработки и выпуска, так и в процессе эксплуатации. Существуют два метода измерения параметров, характеризующих бактерицидное излучение: спектральный метод и интегральный метод.

При введении облучательных установок в действие и при контроле за ними в процессе эксплуатации используется интегральный метод измерения бактерицидной облученности и дозы.

В соответствии с интегральным методом измерения производятся с использованием радиометра, состоящего из радиометрической головки и блока регистрации. Радиометрическая головка включает в себя приемник излучения, относительная спектральная чувствительность которого S(лямбда) максимально приближена к относительной спектральной взвешивающей функции S(лямбда)отн.; в радиометрах, предназначенных для контроля облучательных установок, радиометрическая головка должна быть оснащена косинусной насадкой, которая обеспечивает зависимость чувствительности от направления падающего излучения, близкую к функции cos альфа.

Градуировка радиометра должна производиться по источнику с известной силой бактерицидного излучения Iбк. Для этой цели могут использоваться ртутные лампы низкого давления, аттестованные в соответствии с ГОСТ 8.195-89 по спектральной плотности силы излучения I(лямбда), или, если чувствительность радиометра достаточно велика, — кварцевые галогенные лампы накаливания (например, КГМ 110-1000). Необходимое для градуировки радиометра значение Iбк ламп рассчитывается по формуле:

Радиометр должен быть метрологически аттестован в соответствии с требованиями ГОСТ 8.326-78, при этом исследуемые метрологические характеристики радиометра должны выбираться исходя из публикации МКО N 53.

В качестве примера реализации интегрального метода измерения параметров, характеризующих бактерицидное излучение, можно указать на радиометр РОИ-82 с радиометрической головкой N 1, учитывая, однако, что для его использования требуется дополнительная метрологическая аттестация по ГОСТ 8.326-78, поскольку радиометр предназначается для измерения облученности в энергетических единицах и только одного типа ламп.

Спектральный метод требует сложной и дорогостоящей оптико — электронной аппаратуры, высокой квалификации обслуживающего персонала, а также образцовых средств измерения. Поэтому он используется в хорошо оснащенных лабораториях предприятий — разработчиков бактерицидных ламп и бактерицидных облучательных приборов. Содержание спектрального метода дано в Приложении 2.

Контроль содержания озона в воздушной среде при работе с бактерицидными лампами является обязательным. Для этой цели может быть использован газоанализатор озона мод. 302П1, основные технические характеристики которого следующие:

5. ОБЛАСТИ И МЕТОДЫ ПРИМЕНЕНИЯ БАКТЕРИЦИДНЫХ ЛАМП. ОБЛУЧАТЕЛЬНЫЕ УСТАНОВКИ

Широкое применение бактерицидные лампы находят для обеззараживания воздуха в помещениях, поверхностей ограждений (потолков, стен и пола) и оборудования в помещениях с повышенным риском распространения воздушно — капельных и кишечных инфекций. Эффективно их использование в операционных блоках больниц, в родовых залах и других помещениях роддомов, в бактериологических и вирусологических лабораториях, на станциях переливания крови, в перевязочных больниц и поликлиник, в тамбурах боксов инфекционных больниц, в приемных поликлиник, диспансеров, медпунктов.

В детских учреждениях: в родильных домах, яслях, детских садах, школах. В период эпидемии гриппа целесообразно применять бактерицидные лампы в групповых комнатах детских учреждений, спортзалах, кинотеатрах, столовых, в залах ожидания на вокзалах и портах и в других помещениях с большим и длительным скоплением людей, в том числе на промышленных предприятиях, предприятиях бытового обслуживания населения, в складских помещениях пищевых продуктов, в метро, на автомобильном, железнодорожном и водном транспортах.

Обеззараживание воздушной среды и поверхностей в помещениях производят либо направленным потоком излучения от бактерицидных ламп, либо отраженным от потолка и стен, либо одновременно направленным и отраженным потоком.

Направленное облучение достигается за счет применения передвижных, потолочных, подвесных и настенных облучателей, у которых поток излучения от открытых бактерицидных ламп направляется широким пучком на весь объем помещения. Для достижения облучения отраженным потоком излучение от облучателей направляется в верхнюю зону помещения на потолок. Доля отраженного потока от потолка зависит от оптических свойств отделочных и конструкционных материалов. В таблице 6 приведены значения коэффициентов отражения различных материалов для излучения двух длин волн 254 и 265 нм.

Таблица 6

КОЭФФИЦИЕНТ ОТРАЖЕНИЯ РАЗЛИЧНЫХ МАТЕРИАЛОВ ДЛЯ ИЗЛУЧЕНИЙ ДВУХ ДЛИН ВОЛН 254 И 265 НМ

Комбинированные облучатели позволяют одновременно обеспечить облучение направленным потоком от открытых ламп и отраженным от экранированных, поток излучения которых направлен в верхнюю зону помещения.

Режим облучения может быть непрерывным, повторно — кратковременным и однократным. Непрерывный режим облучения используется в помещениях, как правило, в течение всего рабочего дня, при этом заданный уровень бактерицидной эффективности должен устанавливаться за время не более 2-х часов с момента включения, с тем чтобы поддерживать постоянно этот уровень в соответствии с кратностью естественного или принудительного воздухообмена. При повторно — кратковременном режиме время одного облучения не должно превышать 25 минут, при условии, что за этот промежуток времени достигается заданный уровень бактерицидной эффективности, а интервал между очередными облучениями не должен превышать 2 ч.

Однократный режим облучения применяется, когда надо за короткий промежуток времени обеспечить обеззараживание рабочей поверхности стола или воздушного объема и рабочей поверхности боксов и шкафов, при этом время облучения не должно превышать 15 минут.

По назначению и характеру проводимых работ помещения разделяются на два типа.

Первый тип — это помещения, в которых обеззараживание осуществляется в присутствии людей.

Второй тип — в отсутствие людей.

Обеззараживание в помещениях осуществляется с помощью бактерицидных установок, включающих в себя группу облучателей, расположенных в определенных местах согласно проекту в соответствии с заданным уровнем бактерицидной эффективности, характером проводимых работ в помещении и режимом облучения.

При постоянном пребывании людей в помещении должны применяться облучательные установки с облучателями, у которых полностью отсутствует выход прямого излучения во внешнее пространство, работающие в непрерывном режиме. Это условие удовлетворяется при применении рециркуляторов или системы приточно — вытяжной вентиляции, в канале которой установлены бактерицидные лампы.

Если по характеру работ в помещении возможно кратковременное удаление людей, то допускается обеззараживание помещения направленным потоком излучения только во время отсутствия людей, с помощью применения передвижных, потолочных, подвесных, настенных или комбинированных облучателей, работающих в повторно — кратковременном режиме.

Облучательные установки для обеззараживания отраженным потоком излучения должны применяться только в случаях кратковременного пребывания людей, например в проходах, курительных комнатах, туалетах или складских помещениях, при этом необходимо соблюдение соответствующих предельно допустимых норм на значение облученности, длительности разового облучения, интервала между облучениями и суммарного времени облучения (см. раздел 7).

Кроме того, облучатели должны быть размещены таким образом, чтобы полностью исключить облучение людей направленным потоком излучения.

Возможно использование облучательной установки смешанного типа, которая позволяет обеззараживать воздушную среду с помощью рециркуляторов или приточно — вытяжной вентиляции в непрерывном режиме с пребыванием людей, и обеззараживание помещения направленным потоком излучения от облучателей в повторно — кратковременном режиме при удалении людей во время облучения. В этом случае время очередного облучения может быть сокращено до 5 минут, а интервал между очередными облучениями увеличен до 3-х часов.

Если в помещении по его назначению не предусмотрено пребывание людей, то для его обеззараживания могут применяться облучательные установки с любым типом облучателей, работающих в непрерывном режиме.

Для обеззараживания предметов обихода (посуды, столовых приборов, парикмахерского и лабораторного инструмента, игрушек и т.п.) используются боксы, шкафы или небольшие контейнеры с решетчатыми полками, на которых располагаются предметы, облучаемые бактерицидными лампами, расположенными таким образом, чтобы облучать эти предметы, по крайней мере, с верхней и нижней сторон.

Необходимо отметить, что обеззараживание с использованием бактерицидных ламп является достаточно энергоемким процессом, поэтому выбор той или иной облучательной установки, при прочих равных условиях, должен быть экономически оправданным. Это может быть выявлено при проведении нескольких вариантов расчета.

Целью расчета является удовлетворение заданным требованиям в части обеспечения уровня бактерицидной эффективности Iбк, %, за определенное время облучения tв в воздушной среде и на поверхности пола помещений, а также воздушного потока в каналах приточно — вытяжной вентиляции с помощью промышленных бактерицидных ламп и облучателей.

Порядок расчета состоит из трех этапов:

I этап — постановка задачи. Этот этап включает формулирование требований к обеззараживанию воздушной среды помещения с объемом Vn и высотой ho или поверхности площадью Sn, зараженной определенным видом микроорганизма или видами микроорганизмов, а также выбор режима облучения в зависимости от характера проводимых работ в помещении.

II этап — определение исходных данных для расчета. На этом этапе в соответствии с постановленной задачей выбирается тип облучателя, а также определяются необходимые параметры из таблиц 2, 4, 5 и значение дозы, соответствующей заданному уровню бактерицидной эффективности и виду микроорганизма согласно таблице 2, для проведения расчета.

III этап — проведение расчета в зависимости от поставленной задачи с использованием формул и номограмм, которые приводятся ниже.

Важно заметить, что расчет является оценочным, поэтому после монтажа бактерицидной облучательной установки при ее аттестации необходимо проведение измерений фактической облученности и определение бактерицидной эффективности; в случае расхождения следует скорректировать время облучения до получения соответствия заданным требованиям.

1. Обеззараживание воздушной среды помещений

(1)

где:

Кбк — вспомогательный коэффициент;

Нбк — доза, Дж/кв. м, значение которой берется из таблицы 2 согласно заданному виду микроорганизма и уровню бактерицидной эффективности Iбк, %;

Нбк(st) — доза, соответствующая бактерицидной эффективности для санитарно — показательного микроорганизма Staphylococcus aureus (золотистый стафилококк).

(2)

где:

Nо — число необходимых облучателей для установки в помещении;

tв — время облучения, необходимое для обеспечения заданного уровня бактерицидной эффективности Iбк, %, в воздушной среде, ч;

Qо — производительность, куб. м/ч, значение которой берется из табл. 5, согласно выбранному типу облучателя;

Vп — объем помещения, куб. м;

(3)

где:

ЭТАуд — удельная производительность, характеризующая эффективность облучателя, куб. м/Вт.ч;

Ра — активная мощность облучателя, Вт (из табл. 4).

2. Обеззараживание поверхности пола

(4)

где:

Ко — коэффициент использования бактерицидного потока, падающего на поверхность пола от потолочных и подвесных облучателей (для настенных облучателей Ко уменьшается вдвое);

hп — высота установки облучателей над поверхностью пола, м (выбирается с учетом неравенства 2,5 <= hп <= hо);

hо — высота помещения, м.

(5)

где:

Еп — средняя облученность на поверхности пола, Вт/кв. м;

Фл,бк, ЭТАо — суммарный бактерицидный поток открытых ламп и КПД облучателя (из табл. 5);

Sп — поверхность пола, кв. м.

(6)

где:

Еср — средняя облученность на рабочей поверхности стола или бокса, Вт/кв. м;

hс — высота подвеса облучателя над рабочей поверхностью, выбирается с учетом неравенства 2 >= hс >= 0,5;

Ео,бк — облученность, Вт/кв. м, на расстоянии 1 м от облучателя (из табл. 5).

(7)

где:

Еп — средняя облученность на рабочей поверхности, Вт/кв. м;

tп — расчетное время облучения рабочей поверхности, ч.

В случае, если не соблюдается неравенство <= 1, то за время облучения принимается значение tп.

3. Обеззараживание воздуха в каналах приточно — вытяжной вентиляции

(8)

где Qв — производительность приточно — вытяжной вентиляции, куб. м/ч.

(9)

где:

dк — гидравлический диаметр воздуховода, м;

L х l — площадь сечения воздуховода, кв. м.

(10)

где:

Nл — число ламп, обеспечивающих обеззараживание воздуха в канале воздуховода;

Фл,бк — бактерицидный поток, Вт, используемой лампы (берется из таблицы 3);

r — вспомогательный коэффициент, значение которого определяется по номограмме на рис. 5 в зависимости от значения Qв и dк.

Типовые примеры расчетов бактерицидных облучательных установок

Пример 1.

Постановка задачи. Требуется обеспечить обеззараживание воздушной среды помещения с объемом Vп = 300 куб. м от золотистого стафилококка с бактерицидной эффективностью Iбк = 90% с помощью передвижного облучателя ОПБе-450 в отсутствие людей. Режим облучения повторно — кратковременный в течение рабочего дня.

Исходные данные:

Vп = 300 куб. м;

Qо = 900 куб. м/ч — из табл. 5;

Нбк = Нбк(st) = 49,5 Дж/кв. м — из таблицы 2;

Nо = 1;

Ра = 200 Вт — из таблицы 4;

Iбк = 90%.

Расчет. Формулы 1, 2, 3:

1.

2. При применении передвижных облучателей определяется номинальное время облучения:

Пример 2.

Постановка задачи. Требуется обеспечить обеззараживание воздушной среды и поверхности пола помещения объемом 300 куб. м и высотой 3 м от золотистого стафилококка с бактерицидной эффективностью 90% в отсутствие людей за время 0,25 ч с помощью потолочных облучателей ОПБ-36. Режим облучения повторно — кратковременный при работе 2-х открытых ламп ДБ-36-1.

Исходные данные:

Iбк = 90%;

Нбк = Нбк(st) = 49,5 Дж/кв. м — из таблицы 2;

Qо = 788 куб. м/ч — из таблицы 5;

tв = 0,25 ч;

Фл,бк = 10,5 x 2 = 21 Вт — из табл. 3;

ЭТАо = 0,65 — из табл. 5;

Vп = 300 куб. м;

hо = hп = 3 м;

Sп = 100 куб. м;

Ра = 125 Вт — из табл. 4.

Расчет.

А. Обеззараживание воздушной среды. Формулы 1, 2, 3:

1.

2.

3.

Б. Обеззараживание поверхности пола. Формулы 4, 5, 7:

1.

2.

3.

4. Проверка неравенства

Пример 3.

Постановка задачи. Требуется обеспечить обеззараживание воздушной среды помещения с объемом 300 куб. м от стафилококка с бактерицидной эффективностью 90% с помощью рециркуляторов типа ОББ 2×15 при их непрерывной работе в течение 1,5 ч без вентилятора в присутствии людей.

Исходные данные:

Iбк = 90%;

Нбк = Нбк(st) = 49,5 Дж/кв. м — из таблицы 2;

Qо = 76 куб. м/ч — из таблицы 5;

Vп = 300 куб. м;

tв = 1,5 ч;

Ра = 50 Вт — из табл. 4.

Расчет. Формулы 1, 2, 3:

1.

2.

3.

Пример 4.

Постановка задачи. Требуется обеспечить обеззараживание воздушной среды бокса (высота 0,75 м, ширина 0,75 м, длина 1 м) и рабочей поверхности от тубер. пал. с бактерицидной эффективностью 99,9% с помощью облучателя ОББ 2×15. Режим облучения однократный.

Исходные данные:

Vп = 0,75 x 0,75 x 1 = 0,56 куб. м;

Sп = 0,75 x 1 = 0,75 кв. м;

Ра = 50 Вт — из табл. 4;

Qо = 113 куб. м/ч — из табл. 5;

Нбк = 100 Дж/кв. м — из табл. 2;

Нбк(st) = 66 Дж/кв. м — из табл. 2;

Ео = 0,38 Вт/кв. м — из табл. 5;

hс = 0,75 м;

Nо = 1.

Расчет.

А. Обеззараживание воздушной среды. Формулы 1, 2:

1.

2.

3.

Б. Обеззараживание рабочей поверхности. Формулы 6, 7:

1.

2.

3. Проверка неравенства:

следовательно, надо выбрать время однократного облучения 300 с.

Пример 5.

Постановка задачи. Требуется обеспечить обеззараживание воздушного потока в канале сечением 0,75 x 0,75 м в проточно — вытяжной вентиляции помещения объемом 300 куб. м от золотистого стафилококка с бактерицидной эффективностью 90% за время полного воздухообмена 0,25 ч с помощью бактерицидных ламп ДРБ 40.

Исходные данные:

Iбк = 90%;

Нбк = Нбк(st) = 49,5 Дж/кв. м — из табл. 2;

Фл,бк = 9 Вт — из табл. 2;

tв = 0,25 ч;

Vп = 300 куб. м;

L = 0,75 м;

l = 0,75 м.

Расчет. Формулы 8, 9, 10:

1.

2.

3. Из номограммы на рис. 5 по известным Qв и dк получим r = 3.

4.

6. ТРЕБОВАНИЯ БЕЗОПАСНОСТИ И ПРАВИЛА ЭКСПЛУАТАЦИИ ОБЛУЧАТЕЛЬНЫХ УСТАНОВОК С БАКТЕРИЦИДНЫМИ ЛАМПАМИ

Бактерицидное излучение при его попадании на открытые части тела человека (особенно на глаза) может вызвать сильные ожоги, поэтому рекомендуется использовать бактерицидные лампы для обеззараживания помещений только в отсутствие людей. В отдельных случаях возможно обеззараживание помещений в присутствии только взрослых людей, но при этом лампы должны быть экранированы непрозрачным отражателем, направляющим бактерицидный поток в верхнюю зону помещения так, чтобы никаких лучей, как непосредственно от лампы, так и отраженных от деталей арматуры облучателя, не попадало в зону пребывания людей.

Применение неэкранированных ламп, которые могут оказаться в поле зрения, категорически запрещается.

При использовании комбинированных облучателей, имеющих верхнюю экранированную лампу и нижнюю открытую, должно быть предусмотрено раздельное управление каждой лампой. Экранированная лампа должна управляться выключателем, установленным в помещении, где размещен облучатель, а нижняя, открытая лампа, предназначенная для обеззараживания воздуха и поверхностей в помещении в отсутствие людей, — выключателем, расположенным вне помещения, у входа в него. При этом выключатель, управляющий открытой лампой, должен быть сблокирован с сигнальным устройством, установленным над входом в помещение: НЕ ВХОДИТЬ! ВКЛЮЧЕНЫ БАКТЕРИЦИДНЫЕ ЛАМПЫ.

Облучатели, предназначенные для эксплуатации, должны иметь сопровождающую документацию, в которой указаны технические характеристики, тип лампы, бактерицидный поток, срок годности и дата изготовления.

Во всех облучательных установках бактерицидные лампы и детали облучателей должны содержаться в чистоте, так как даже тонкий слой пыли существенно задерживает поток излучения.

Чистка должна производиться только после отключения облучателей от сети.

Передвижные бактерицидные облучатели после работы должны находиться в специально отведенном для них помещении и закрываться чехлами.

Лампы, прогоревшие положенное число часов (в соответствии со сроком их службы), должны заменяться на новые. Основанием для замены ламп может служить также спад потока лампы ниже установленного предела, подтвержденный метрологической поверкой. При нарушении целостности лампы должно быть обеспечено исключение попадания ртути и ее паров в помещение. Запрещается выброс как целых, так и разбитых ламп в мусоросборники. Такие лампы необходимо направлять в региональные центры по демеркуризации ртутьсодержащих ламп. При попадании ртути в помещение необходимо проведение демеркуризации помещения в соответствии с «Методическими рекомендациями по контролю за организацией текущей и заключительной демеркуризации и оценке ее эффективности» N 545-87 от 31.12.87.

Как уже указывалось, при работе бактерицидных ламп в воздушной среде помещения возможно образование озона. Озон представляет более серьезный риск для здоровья человека, чем считалось ранее. К воздействию озона наиболее чувствительны дети, а также люди, страдающие легочными заболеваниями. Это обстоятельство требует проведения систематического контроля концентрации озона в воздушной среде помещения, в котором установлены бактерицидные облучатели, на соответствие существующим нормам.

С целью снижения уровня концентрации озона предпочтительнее использование «безозонных» бактерицидных ламп. «Озонные» лампы могут применяться в помещениях в отсутствие людей, при этом необходимо обеспечение тщательного проветривания после проведения сеанса облучения.

7. САНИТАРНО — ГИГИЕНИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ

Санитарно — гигиенические показатели включают в себя характеристику помещения, нормы и перечень требований, направленных, с одной стороны, на достижение заданного уровня эпидемиологической защиты, а с другой стороны, — на обеспечение условий, исключающих вредное воздействие излучения и озона на людей.

В зависимости от категории помещения и степени риска передачи инфекции рекомендуются уровни бактерицидной эффективности, приведенные в таблице 7.

Таблица 7

РАЗДЕЛЕНИЕ ПОМЕЩЕНИЙ МЕД. НАЗНАЧЕНИЯ ПО КАТЕГОРИЯМ В ЗАВИСИМОСТИ ОТ НЕОБХОДИМОГО УРОВНЯ БАКТЕРИЦИДНОЙ ЭФФЕКТИВНОСТИ ДЛЯ ЗОЛОТИСТОГО СТАФИЛОКОККА ПРИ ОБЕЗЗАРАЖИВАНИИ ВОЗДУХА (ДО НАЧАЛА РАБОТЫ)

<*> Нормы по обсемененности операционных — Приказ N 720, 1978.

<**> Нормы по обсемененности операционных, ЦСО — Приказ N 254.

<***> Нормы по обсемененности операционных, акушерских стационаров — Приказ N 691, 1989.

Уровень бактерицидной облученности в рабочей зоне на условной поверхности на высоте 2 м от пола в помещениях, в которых осуществляется обеззараживание при наличии людей, не должен превышать 0,001 Вт/кв. м, при этом суммарное время облучения в течение смены не должно превышать 60 минут.

Концентрация озона в воздушной среде помещений не должна превышать допустимую — 0,03 мг/куб. м (ПДК атмосферного воздуха).

8. САНИТАРНО — ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКИЙ НАДЗОР ЗА ПРИМЕНЕНИЕМ БАКТЕРИЦИДНЫХ ЛАМП

Устройство и эксплуатация бактерицидных облучательных установок без проведения санитарно — эпидемиологического надзора не допускается.

На стадии проектирования и оборудования помещений бактерицидными облучательными установками проводится предупредительное санитарное обследование медучреждения, в ходе которого определяется перечень помещений, подлежащих бактерицидному облучению, номенклатура применяемых облучателей, необходимая мощность ламп, места и высота подвеса стационарных облучателей. Контролируется обеспечиваемая доза облучения и защита людей от возможного неблагоприятного действия излучения, а также устройство вентиляции в облучаемых помещениях.

При вводе в эксплуатацию и периодически в процессе эксплуатации бактерицидных облучательных установок проводится текущий санитарно — эпидемиологический надзор, в ходе которого определяется соответствие облучательной установки проекту, типы облучателей и ламп, их исправность, режим использования, качество ухода, своевременность замены ламп, прогоревших установленное число часов, а также порядок хранения и утилизации вышедших из строя бактерицидных ламп.

В ходе текущего санитарно — эпидемиологического надзора проводится метрологический контроль облученности и дозы облучения в зоне пребывания людей, концентрации озона в воздухе помещения и бактериологический контроль бактерицидной эффективности облучательной установки (см. Приложение 3). Выявленные параметры соотносятся с действующими нормативами и заносятся в журнал регистрации, в котором указываются наименование и назначение помещения, тип и количество бактерицидных облучателей и ламп, время работы облучательной установки, в присутствии или в отсутствие людей проводилось облучение, результаты замеров облученности, бактерицидная эффективность облучения, концентрация озона в воздухе до и после проветривания, фамилия ответственного лица, отвечающего за работу облучательной установки, заключение о разрешении или неразрешении эксплуатации облучательной установки.

Контроль бактерицидных облучательных установок должен осуществляться не реже 1 раза в год.

9. ИСПОЛЬЗУЕМЫЕ ТЕРМИНЫ, ВЕЛИЧИНЫ И ЕДИНИЦЫ ИЗМЕРЕНИЯ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Publ. CIE N 53. Methods of characterising the performance of radiometers and pfotometers, 1982.

2. Publ. CIE N 63. The spectroradiometric measurement of liqhtsources, 1980.

3. Д.Н. Лазарев. Ультрафиолетовая радиация и ее применение. ГЭИ, Л. — М., 1950.

4. The measurement of actinic radiation. CIE, Technical Report, 2nd draft, May 1985.

5. DIN 5031 Teil 10 (Vornorm). Strahlungsphysik im optishen Bereich und Lichttechnik Groben, Formel und Kurzzeichen fur photobiologisch wirbsame Strahlung.

6. ГОСТ 8.195-89. Государственная поверочная схема для средств измерений спектральной плотности энергетической яркости, спектральной плотности силы излучения и спектральной плотности энергетической освещенности в диапазоне длин волн 0,25 — 25,0 мкм, силы излучения и энергетической освещенности в диапазоне длин волн 0,2 — 25,0 мкм.

7. ГОСТ 23198-78. Лампы газоразрядные. Методы измерения спектральных и цветовых характеристик.

8. ГОСТ 8.326-78. Метрологическое обеспечение разработки, изготовления и эксплуатации нестандартизованных средств измерений.

9. ГОСТ 8.326-89. Метрологическая аттестация средств измерений.

10. Н.Г. Потапченко, О.С. Савлук. Исследование ультрафиолетового излучения в практике обеззараживания воды. «Химия и технология воды». 1991. Т. 13. N 12.

11. Г.С. Сарычев. Облучательные светотехнические установки. Энергоатомиздат, 1992.

12. В.В. Мешков. Основы светотехники. Ч. 1. 2-е изд. М.: Энергия, 1979.

13. Санитарные нормы ультрафиолетового излучения в производственных помещениях. МЗ СССР. Москва, 1988.

14. Предельно допустимые концентрации (ПДК) загрязняющих веществ в атмосферном воздухе населенных мест. МЗ СССР. Гл. санитарно — эпидемиологическое управление. Москва, 1984.

15. Обеззараживание воздуха с помощью ультрафиолета в медицине и в промышленности. Перевод проспекта фирмы «Heraeus». «Sterisol…», «Original Hanau».

16. «Временные указания по применению бактерицидных ламп». Изд-во АН СССР, 1956.

17. А.Б. Матвеев, С.М. Лебедкова, В.И. Петров. Электрические облучательные установки фотобиологического действия. Московский энергетический институт. Москва, 1989.

Приложение 1

СХЕМЫ ВКЛЮЧЕНИЯ БАКТЕРИЦИДНЫХ ЛАМП В СЕТЬ

На рис. П.1 <*> приведена наиболее распространенная одноламповая стартерная схема включения бактерицидной лампы Л с токоограничивающим электромагнитным элементом в виде дросселя L. В этой схеме стартер Ст, подключенный параллельно лампе, обеспечивает ее зажигание. Стартер представляет собой малогабаритную неоновую лампу тлеющего разряда с двумя электродами, один из которых выполнен из биметаллической ленты. Выпускаются стартеры, у которых оба электрода выполнены из биметаллической пластины.

<*> Рисунки не приводятся.

На рис. П.2 приведена одноламповая бесстартерная схема включения. В этой схеме для предварительного нагрева электродов лампы применен маломощный трансформатор с двумя вторичными накальными обмотками Тн. Напряжение сети, приложенное к электродам (при холодных электродах), является недостаточным для пробоя и зажигания лампы. Трансформатор Тн обеспечивает предварительный нагрев электродов, и после того, когда их температура достигнет необходимого значения, происходит зажигание лампы. При работающей лампе напряжение на первичной обмотке уменьшается и соответственно уменьшается нагрев электродов, что исключает их перегрев.

Встречаются ПРА, предназначенные для последовательного включения двух ламп (см. П.3 и П.4) с напряжением на каждой из них 50 — 60 В. Непременным условием использования двухламповых ПРА с последовательным включением ламп является соблюдение неравенства , а также соответствие рабочего тока лампы с номинальному току ПРА.

В качестве токоограничивающих элементов могут применяться управляемые полупроводниковые приборы — транзисторы и тиристоры, на базе которых созданы различные модификации электронных ПРА. Относительная сложность схем таких ПРА во многих случаях применения оправдывается их достоинствами: малая масса ПРА из-за существенного сокращения затрат обмоточной меди и электротехнической стали, небольшие потери мощности, повышение КПД излучения и снижение акустического шума.

Использование дросселя в виде токоограничивающего элемента приводит к снижению коэффициента мощности сети (cos фи о ), численно равному:

где:

Uл — напряжение на лампе;

Uс — напряжение сети.

Применение ПРА с низким значением cos фио вызывает почти двухкратное увеличение потребляемого тока из сети и, следовательно, рост потерь мощности в питающих линиях.

Увеличение значения cos фи достигается двумя путями: либо подключением компенсирующего конденсатора Ск параллельно сети для одноламповых схем, либо использованием двухламповой схемы, в которой в цепи одной лампы включен дроссель, а в другой последовательно с дросселем включен балластный конденсатор Сб, как это изображено на рис. П.5.

При одноламповых схемах включения компенсация коэффициента мощности может быть осуществлена для группы ламп. В этом случае емкость компенсирующего конденсатора Ск, необходимая для достижения cos фи к = 0,9, определяется из соотношения:

где:

N — число ламп;

Iл — ток лампы, А;

Uс — напряжение сети, В;

фи к — arccos 0,9 = 26°;

фи о = arccos , град.

Для подавления электромагнитных колебаний, создающих помехи радиоприему, применяются специальные конденсаторы Ср, включаемые параллельно лампе и сети (см. рис. П.1, П.2, П.3). Емкость таких конденсаторов примерно равна 0,05 мкф. Обычно они входят в комплект ПРА.

При работающей лампе ПРА является источником акустического шума. Основной причиной возникновения шума является вибрация металлических деталей (пластин магнитопровода, корпуса ПРА и деталей облучателя). Шумы излучаются в широком диапазоне частот от десятков Гц до десятков кГц, охватывающем область частот, воспринимаемых ухом человека. При некоторых обстоятельствах наличие постороннего шума в помещении может создать существенную помеху. Поэтому выпускаемые ПРА в зависимости от вида помещения разделяются на три класса: Н-3 — с нормальным уровнем шума — для промышленных зданий; Н-2 — с пониженным уровнем шума — для административно — служебных помещений; Н-1 — с особо низким уровнем шума — для бытовых, учебных и лечебных помещений.

Основные технические параметры ПРА приведены в таблице.

Таблица

ОСНОВНЫЕ ТЕХНИЧЕСКИЕ ПАРАМЕТРЫ ПРА ДЛЯ РТУТНЫХ ЛАМП НИЗКОГО ДАВЛЕНИЯ

Приложение 2

СПЕКТРАЛЬНЫЙ МЕТОД ИЗМЕРЕНИЯ УЛЬТРАФИОЛЕТОВОГО ИЗЛУЧЕНИЯ БАКТЕРИЦИДНЫХ ЛАМП

В соответствии со спектральным методом производится измерение спектральной плотности мощности излучения лампы Фл(лямбда) или другой радиометрической величины, представляющей интерес (например, спектральной плотности облученности Е (лямбда)),

лямбда спектральной плотности силы излучения I (лямбда) и т.п. и затем

л значение бактерицидного потока или другой эффективной величины (например, бактерицидной облученности, бактерицидной силы излучения и т.п.) рассчитывается по формуле:

где S(лямбда)отн. — относительная спектральная взвешивающая функция, учитывающая различную эффективность воздействия излучения различных длин волн на бактерии. При определении других эффективных величин (например, бактерицидной облученности Ебк, бактерицидной силы излучения Iбк и т.п.) в формуле подставляются другие измерения радиометрические величины (соответственно Е лямбда (лямбда), I лямбда (лямбда) и т.п.).

Пределы интегрирования лямбда1 = 250 нм, лямбда2 = 315 нм — это длины волн излучения, ограничивающие спектральный участок, за пределами которого излучение практически не оказывает бактерицидного действия, т.е. для которого значение S(лямбда)отн. = 0.

Значения функции S(лямбда)отн. приведены в табл. 1.

Измерения Ф (лямбда)лямбда должны производиться в соответствии с требованиями публикации МКО N 63 и ГОСТ 23198-78. Измерительная установка должна включать в себя спектральный прибор, схему освещения входной щели, приемник излучения, прибор для регистрации сигнала с приемника излучения и лампу сравнения, аттестованную в органах Госстандарта по значениям спектральной плотности облученности на участке 205 — 315 нм в соответствии с требованиями ГОСТ 8.195-89. Кроме того, в состав измерительной установки должны входить вспомогательные средства измерения и оборудование, обеспечивающие работу и контроль режимов измеряемой лампы, лампы сравнения и приемника излучения. Измерительная установка в целом должна быть метрологически аттестована в соответствии с требованиями ГОСТ 8.326-78.

Примерный состав спектральной установки:

спектральный прибор — спаренные монохроматоры с дифракционной решеткой МДР 23;

схема освещения — диффузно отражающая пластинка или полый шар, выполненные из материала политетрафторэтилен (холон), кварцевая линза;

приемник излучения — фотоэлектронный умножитель ФЭУ-100;

приборы регистрации сигнала приемника — Щ-300, Ф-30;

лампа сравнения — кварцевая галогенная лампа накаливания КГМ 110-1000;

блок питания фотоумножителя — ВС-22;

блок питания лампы сравнения — БП-120-10;

приборы контроля режима питания лампы сравнения — образцовая катушка сопротивления Р 310, Ф 30. Спектральный метод рекомендуется для использования в хорошо оснащенных лабораториях предприятий — разработчиков бактерицидных ламп и бактерицидных облучательных приборов.

В качестве примера в таблице приведены результаты измерения спектрального распределения облученности на расстоянии 0,5 м, создаваемой бактерицидной лампой ДБ 8. На участке 220 — 320 нм облученности даны для интервалов шириной 2 нм, в спектральной области 320 — 800 нм — для интервалов 10 нм — середина интервалов.

Таблица

Расчеты, выполненные по результатам измерений, дают следующие значения параметров лампы ДБ 8: облученность в интервале 220 — 320 нм составляет Е = 0,737 Вт/кв. м, бактерицидная облученность Ебк = 0,600 Вт/кв. м (или в прежней системе единиц Ебк = 0,712 бакт/кв. м; облученность в интервале 220 — 800 нм составляет Е = 0,820 Вт/кв. м.

Приложение 3

БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКИЙ КОНТРОЛЬ ЗА ПРИМЕНЕНИЕМ БАКТЕРИЦИДНЫХ ЛАМП

1. Исследования микробной необсеменности воздуха

Бактериологические исследования воздуха предусматривают определение общего содержания микроорганизмов в 1 куб. м воздуха и определение содержания золотистого стафилококка в 1 куб. м воздуха.

Пробы воздуха отбирают аспирационным методом с помощью прибора Кротова (прибор для бактериологического анализа воздуха, модель 818).

Для определения общего содержания микроорганизмов протягивают 100 литров воздуха со скоростью 25 л в минуту (4 минуты). Для определения золотистого стафилококка — 250 л воздуха (10 минут) с той же скоростью.

Примечание. При отсутствии в лаборатории прибора Кротова возможно использовать для этих целей другие аспирационные приборы (пробоотборники ПАБ-2, импактор Андерсена и др.).

Для определения общего содержания микроорганизмов в 1 куб. м воздуха отбор проб производится на 2% питательном агаре. После инкубации при 37 °C в течение 24 часов производят подсчет выросших колоний и делают пересчет на 1 куб. м воздуха.

Для определения золотистого стафилококка в 1 куб. м воздуха отбор проб производят на желточно — солевом агаре (ЖСА). После инкубации посевов при 37 °C в течение 24 часов при комнатной температуре отбирают подозрительные колонии, которые подвергают дальнейшему исследованию в соответствии с Приказом МЗ СССР N 691 от 28.12.1989.

Примеры оценки микробной обсеменности воздуха приведены в табл. (Приказ МЗ СССР N 720 от 31.07.78).

Таблица

<*> КОЕ — колониеобразующие единицы.

Для контроля обсемененности воздуха боксированных и других помещений, требующих асептических условий для работы, может быть использован седиментационный метод. В соответствии с этим методом на рабочий стол ставят 2 чашки Петри с 2% питательным агаром и открывают их на 15 минут. Посевы инкубируют при температуре 37 °C в течение 48 часов. Допускается рост не более 3 колоний на чашке.

2. Исследования микробной обсемененности поверхностей

Бактериологическое исследование микробной обсемененности поверхностей ограждений помещений и оборудования предусматривает обнаружение микроорганизмов семейств Enterobacteriaceae, Starh. aureus, Pseudomonas aeruginosa.

Отбор проб с поверхностей осуществляется методом смывов. Взятие смывов производят стерильным ватным тампоном на палочках, вмонтированных в пробки с 5 мл стерильной 1% пептонной водой. Тампоны увлажняют питательной средой, делают смыв и помещают в ту же пробирку и погружают в пептонную воду. Смыв проводят с площади не менее 100 кв. см, тщательно протирая поверхность.

Из каждой отобранной пробы производят посев непосредственно влажным тампоном на чашку Петри с желточно — солевым агаром и 0,5 мл смывной жидкости, засевают в 0,5 мл бульона с 6,5% хлорида натрия для выделения золотистого стафилококка. Для выявления энтеробактерий и Псеудомонас аеругиноза посев производят из пробирок с 1% пептонной водой после инкубации при 37 °C в течение 18 — 20 часов на среду Эндо.

Дальнейшее исследование проводят в соответствии с Приказом МЗ СССР от 28.12.89 N 691 «О профилактике внутрибольничной инфекции в акушерских стационарах», «Методическими указаниями по микробиологической диагностике заболеваний, вызываемых энтеробактериями» МЗ СССР N 04-723/3 от 17.12.84 и «Методическими рекомендациями по определению грамотрицательных потенциально патогенных бактерий — возбудителей внутрибольничных инфекций» МЗ СССР от 03.06.86.

При оценке эффективности воздействия бактерицидного облучения на плесневые грибы бактериологические исследования проводятся с применением среды Сабуро.

Приложение 4

ПЕРЕЧЕНЬ
ОРГАНИЗАЦИЙ, ОКАЗЫВАЮЩИХ УСЛУГИ ПО ПРИМЕНЕНИЮ БАКТЕРИЦИДНЫХ ЛАМП

Облучатель — необходимая вещь, о которой, как правило, вспоминают при вспышках различных заболеваний. Важно знать, на что ориентироваться, как выбирать рециркулятор в зависимости от целей.

На что обращать внимание при выборе облучателя

Прежде всего, стоит разобраться, какие параметры важны для выбора рециркулятора:

• объём обрабатываемой области;
• интерьер комнаты;
• варианты установки.

Это главные характеристики, из которых нужно исходить при выборе того или иного прибора. Так, для начала следует вычислить объём помещения, для чего нужно умножить его площадь на высоту потолков. В параметрах устройства указывается производительность, исходя из чего можно понять, на какой объём комнаты последний рассчитан.

Как выбрать рециркулятор, который бы устраивал по всем параметрам? Также стоит обратить внимание на такой нюанс: если приобрести продукт с маленькой мощностью для большого помещения, от него едва будет заметен эффект. И наоборот также не стоит делать, поскольку если установить мощный облучатель в небольшую комнату, можно только навредить себе послаблением иммунитета. Все знают о том, что микроорганизмы умеют накапливать резистентность, мутируя и становясь невосприимчивыми к ультрафиолету.

Дизайн комнаты важен не только для тех, кто желает красиво оборудовать дом. Когда речь заходит о рециркуляторе, — какой выбрать для конкретной области, сразу стоит вспомнить и о таком параметре, чтобы прибор отлично туда вписался. Очень важно учитывать мебель и прочие предметы интерьера. Как правило, специалисты советуют для домашнего использования облучатели с пластиковым корпусом, а для промышленных целей — модели с металлической коробкой. Последний также хорошо впишется в интерьеры типа хай-тек, минимализм.

Вариантов установки рециркулятора может быть несколько:

• напольное;
• настенное;
• подвижное (мобильное).

Зная эти параметры, будет уже легче понять, как выбрать рециркулятор бактерицидный.

Критерии выбора облучателя в зависимости от типа помещений

Это ещё один важный параметр, на который стоит обратить внимание. Для дома рекомендуется приобретать один рециркулятор, а для мест скопления людей — другой. Рассмотрим общие рекомендации.

Для дома подойдёт устройство, оснащённое 1-3 ультрафиолетовыми лампами с мощностью 15-30 Вт, стиль подбирается в зависимости от дизайна квартиры. Мощности вполне хватит для помещения до 30 м³. Установка может быть настенной, напольной или подвижной (для последних двух необходимо приобретать подставку отдельно, что следует иметь в виду). Ещё один нюанс касательно рециркулятора воздуха, как выбрать последний: стоит учитывать, что если в доме есть дети, пожилые люди или домашние животные, то рекомендовано приобретать рециркулятор с настенной установкой — чтобы те не могли случайно опрокинуть прибор. При большой площади возможны два варианта: либо приобрести несколько облучателей с одной лампой, либо же один рециркулятор с повышенной производительностью.

Для школы либо детского сада важна производительность. Рекомендованные параметры — 60-100 м³/ч с 2-3 ультрафиолетовыми лампами. То же самое можно сказать и о том, как подобрать рециркулятор для школьного класса. Можно обратить внимание на модели с выбором режима и таймером. Существуют приборы с цветным корпусом, что будет актуально для детских садов.

В больнице облучатели пользуются особым спросом. В отличие от других помещений, здесь используются два вида облучателей:

• открытого типа;

• закрытого типа (именно их, как правило, и называют просто «рециркуляторы»).

Рециркуляторы открытого типа обычно используются в реанимационных и лабораториях, поскольку в этом случае в помещении не должны находиться люди, животные или комнатные растения. В коридорах, перевязочных, палатах, кабинетах применяются облучатели закрытого типа с 1-3 лампами.

Если облучатель нужен в салон красоты или на ресепшн-зону, тоже важно знать, какой бактерицидный рециркулятор выбрать. В данном случае стоит учитывать поток людей, который довольно высок, поэтому рекомендуется приобретать устройства с общей производительностью более 60 м³/ч. Как правило, такие приборы оснащены 2-3 лампами.

Для гостиниц и кафе, где ещё больше скопление людей, рекомендуется к приобретению ещё более мощный облучатель, оборудованный 3-6 ультрафиолетовыми лампами. Кроме того, для отелей очень удобным вариантом станет передвижной облучатель с 2 лампами, который может работать только в определённое время (во время уборки комнаты).

Характеристики облучателя, на которые нужно обращать внимание

Ещё один нюанс, который поможет узнать, как правильно выбрать рециркулятор, — параметры рециркуляторов. Ниже таковые будут перечислены, чтобы помочь определиться с выбором.

В первую очередь стоит ориентироваться на такие показатели, как:

• мощность и производительность;
• антибактериальная активность;
• крепление;
• габариты;
• управление;
• время работы ламп;
• корпус.

Теперь подробнее о каждой характеристике. Средняя производительность рециркулятора составляет 20-100 м³/ч (1-3 лампы), если производительность больше, то таким образом, устройство будет оснащено как минимум 3 лампами — а такие облучатели способы обработать огромные помещения (например, промышленные цеха). Какой выбрать рециркулятор воздуха, следует исходить и из мощности: так, средняя мощность приборов составляет 15-30 Вт, что вполне хватит для обработки дома.

Антибактериальная активность — характеристика, которая благодаря которой можно узнать, сколько микроорганизмов будет уничтожено за определённое время. Данный параметр зависит от категории помещений (а в частности, от объёма обрабатываемой области, количества присутствующих одновременно людей и срока беспрестанной эксплуатации). Средний параметр — 95-98% антибактериальной активности.

Вкратце было рассмотрено, как подобрать рециркулятор бактерицидный, исходя из такого параметра, как крепление. Это важный параметр для обеспечения безопасности использования прибора. Что касается габаритов, то приборы могут быть малогабаритными (1-1,5 килограмма с длиной 70 сантиметров – 1 метр), а крупногабаритные могут достигать в длину 1,5 метра в вес быть 10-12 килограмм.

«Управление» включает в себя наличие следующих характеристик:

• выбор рабочего режима;
• счётчик наработки часов.

Это особенно удобно для дома, поскольку, например, в медицинских учреждениях время работы отображается в журнале.

Также стоит учитывать время работы ламп, чтобы понимать, как правильно выбрать рециркулятор бактерицидный. Средний срок эксплуатации составляет 8 тысяч часов. Этого хватит на 2,5 года, если облучатель будет работать ежедневно по 8 часов в день. Однако учитывая, что в домашних условиях редко есть необходимость в таком широком использовании, то можно смело говорить, что прибора с такими параметрами хватит на пять лет.

Корпус устройства может быть металлическим, который будет удобен для интенсивной работы, или же для определённого интерьера, или же пластиковым (используется ударопрочный тип материала из стойкого поликарбоната).

Общие рекомендации по выбору облучателя

Следуя несложным советам, можно самостоятельно разобраться, как подобрать рециркулятор воздуха, который бы удовлетворял клиента по всем характеристикам. Это один из самых быстрых способов подбора, независимо от того, к какой категории относится помещение (квартира, школа, спортивный центр, отель, ресепшн-зона, производственный цех).

Вот такие советы пригодятся при выборе оптимального варианта:

• следует как можно более точно определить площадь помещения и его высоту, для дальнейшего расчёта объёма;
• необходимо узнать, какова категория конкретного помещения. Это можно сделать в таблице, которая прилагается к каждому облучателю. От этой характеристики зависит антибактериальная активность;
• для того чтобы знать, какой выбрать облучатель-рециркулятор, стоит обратить внимание и на время обработки помещения. Данный параметр разный в зависимости от конкретной модели и помещения. Кроме того, в характеристиках продукта указывается и объём м³, который облучатель обрабатывает за 1 час;
• если приобрести более слабый по мощности рециркулятор, то лишь увеличит время обработки комнаты. Но не стоит приобретать мощный облучатель в небольшую область, помня про послабление иммунитета и возможность микроорганизмов приобретать устойчивость к УФ-излучению при длительном использовании;
• облучатель рециркулятор подобрать поможет и такой совет: если есть желание быстро обработать помещении, при этом комната является большой, то стоит отдать предпочтение нескольким устройствам;
• следует помнить и о том, что есть облучатели закрытого и открытого типа, а также озоновые и безозоновые. Если орециркуляторах открытого типа уже шла речь, то о приборах без озона следует сказать пару слов отдельно: дело в том, что после них обязательно нужно проветривать помещение. В целом, большей популярностью пользуются рециркуляторы закрытого типа с ультрафиолетовыми лампами вместо озона — это самые безвредные варианты;
• для того чтобы подобрать рециркулятор по параметрам стоит учитывать категорию помещений и антибактериальную эффективность, полная информация о которой указывается в инструкции к конкретной модели;
• для домашнего пользования (особенно если в доме также проживают пожилые люди, домашние животные и дети) подойдут настенные модели, но очень удобны в эксплуатации также и напольные продукты. При необходимости их можно убирать в другие комнаты;
• в зависимости от объёма помещения различаются и габариты устройств. Например, в дом хватит малогабаритной модели, а вот в промышленный цех — крупногабаритный прибор;
• для того чтобы понять, как правильно подобрать рециркулятор воздуха, стоит также учитывать количество ультрафиолетовых ламп и их мощность. Так, для домашнего пользования будет вполне достаточно прибора, оснащённого 1-3 лампами, в то время как для больших помещений стоит присмотреть модели с минимум 3 УФ-лампами;
• средний срок эксплуатации устройства достигает примерно пять лет, так что до этого времени можно не думать о смене устройства (если использовать прибор в домашних условиях ежедневно в течение 4 часов);
• чтобы понимать, как выбрать хороший рециркулятор, обязательно стоит обращать внимание на документы. У продукта должна быть сертификация, подтверждающая качество облучателя;
• одно из основных преимуществ облучателей закрытого типа по сравнению с кварцевыми лампами — в том, что после работы рециркулятора остаётся приятное ощущение комфорта и нет ощущения медицинской стерильности.

Примеры

Стоит разобрать на конкретном примере, как подобрать рециркулятор по площади. Так, если мы имеем производительность рециркулятора в 30 м³/ч, высоту потолка в 3 метра и площадь комнаты в 40 м², то умножаем два последних параметра друг на друга и получаем 120 м³. Значит, для обрабатываемой области необходим облучатель с мощностью 120 м³, и теперь можно приступать к поиску рециркулятора с такими параметрами.

Диагностические лаборатории медицинских организаций, как правило, осуществляют работы с патогенными биологическими агентами (ПБА) III–IV групп патогенности. Чтобы обеспечить в лаборатории требования биологической безопасности, необходимо предусмотреть поточность технологических процессов, зонирование производственных помещений, своевременное проведение дезинфекционных мероприятий. Расскажем о том, как это сделать.

ПБА — это патогенные для человека микроорганизмами и гельминты, а также любые объекты и биологические материалы, подозрительные на их содержание. Классификация микроорганизмов по группам патогенности представлена в СП 1.3.2322-08 «Безопасность работы с микроорганизмами III–IV групп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных болезней».

Зонирование лаборатории

Лаборатория должна иметь 2 входа: один — для персонала, второй — для приема биологического материала на исследования. На входных дверях должно быть обозначено название лаборатории и размещен международный знак «Биологическая опасность».

Производственные помещения лаборатории разделяют на «заразную» и «чистую» зоны (см. схему). В «заразной» зоне выполняют любые виды работ с микроорганизмами и биологическим материалом. «Чистая» зона предназначена для тех видов деятельности, при которых невозможен контакт с патогенными биологическими агентами.

На границе «чистой» и «заразной» зон лаборатории целесообразно предусмотреть санитарный пропускник.

Рабочие столы, стеллажи, оборудование в «заразной» зоне маркируют с помощью международного знака «Биологическая опасность». Помещения «заразной» зоны оборудуют бактерицидными облучателями.

Обратите внимание!

Выносить за пределы лаборатории оборудование, лабораторную или хозяйственную посуду, реактивы, инструменты и прочие объекты можно только после их дезинфекции и с разрешения руководителя лаборатории.

Требования к отделке помещений лаборатории

Поверхности пола, стен, потолка, мебели, оборудования и прочих объектов в помещениях лаборатории должны быть гладкими, устойчивыми к влажной уборке с применением моющих и дезинфицирующих средств. Для пола необходимо предусмотреть гидроизоляцию и антискользящее покрытие.

Батареи отопления в «заразной» зоне располагают на достаточном расстоянии от стен, чтобы обеспечить возможность их дезинфекции.

Окна и двери помещений «заразной» зоны лаборатории должны быть герметичными, иметь запирающие устройства.

Если лаборатория располагается на первом этаже или в цоколе, то окна обязательно оснащают металлическими решетками, не нарушающими правил пожарной безопасности. Для защиты рабочих столов от попадания прямого солнечного света используют светозащитную пленку или жалюзи из материалов, устойчивых к воздействию дезсредств.

Доставка и прием биологического материала

Биологический материал для исследований в лабораторию должен доставляться в закрытых контейнерах, биксах или в сумках-холодильниках, промаркированных с помощью международного знака «Биологическая опасность».

На дно контейнера для транспортировки укладывают адсорбирующий материал (марлевую салфетку, ткань, вату).

Обратите внимание!

Не допускается доставка материала в хозяйственных сумках, чемоданах, портфелях и других предметах личного пользования.

Чтобы исключить контакт бланков-направлений с биологическим материалом, их вкладывают в отдельный полиэтиленовый пакет.

Важно!

Персонал лаборатории должен осуществлять прием и разбор биологического материала с использованием средств индивидуальной защиты: масок и резиновых перчаток.

Работа с патогенными биологическими агентами

Во время работы в «заразной» зоне лаборатории следует соблюдать максимальную осторожность и применять средства индивидуальной защиты. При пипетировании необходимо пользоваться резиновыми грушами или автоматическими устройствами.

Важно!

Запрещается пипетировать ртом и переливать жидкий инфекционный материал через край пробирки, покидать рабочее место во время манипуляций с ПБА, удалять необеззараженные сгустки крови из пробирок вытряхиванием, сливать жидкие отходы в канализацию без предварительного обеззараживания.

Работы с ПБА, представляющие наибольшую опасность для медицинского персонала и окружающей среды, должны выполняться в боксированных помещениях «заразной» зоны лаборатории или в боксах биологической безопасности II класса. К таким работам относятся:

• центрифугирование ПБА и другие манипуляции, вследствие которых образуются аэрозоли;
• приготовление суспензий;
• работа с лиофилизированными ПБА;
• работа по ведению коллекционных штаммов;
• работа по идентификации и изучению выделенных штаммов микроорганизмов.
• серологические исследования и ПЦР-исследованияпо детекции в клиническом материале возбудителей парентеральных вирусных гепатитов В и С, ВИЧ-инфекции и других микроорганизмов II группы патогенности.

 

Во время работ двери боксов и предбоксов должны быть закрыты. До момента окончания работ выход из боксов не допускается.

Перед началом работ с использованием боксов биологической безопасности включают вентиляцию, проверяют исправность оборудования, наличие аварийного запаса дезинфицирующих средств. Манипуляции с ПБА должны выполняться ближе к задней стенке бокса на поддонах с салфетками, смоченными дезинфицирующим раствором.

После окончания работ с ПБА переднюю панель бокса биологической безопасности опускают, внутри бокса включают бактерицидные лампы.

Обратите внимание!

Боксы биологической безопасности должны проверяться на защитную эффективность:

• после монтажа и подготовки к использованию;

• после перемещения или ремонта;

• не реже одного раза в год при наличии фильтров предварительной очистки воздуха от крупнодисперсных частиц;

• не реже 2 раз в год при отсутствии фильтров предварительной очистки воздуха от крупнодисперсных частиц.

При проверке боксов должны контролироваться параметры эффективности работы фильтров очистки воздуха и скорость воздушного потока в рабочем проеме бокса.

По окончании работ в «заразной» зоне все объекты, содержащие ПБА, должны быть убраны в холодильники, термостаты или лабораторные шкафы. При наличии коллекции культур микроорганизмов их хранилища опечатываются. Все рабочие поверхности дезинфицируются. Помещения «заразной» зоны лаборатории запираются и опечатываются.

Дезинфекционные мероприятия в лаборатории

При организации дезинфекционных мероприятий в лабораториях применяют физические и химические методы дезинфекции.

Для обеззараживания лабораторной посуды, защитной одежды персонала, бактериологических посевов, а также жидких отходов можно применять паровые стерилизаторы.

В воздушных стерилизаторах допускается обеззараживать лабораторную посуду из стекла, металлов или силикона, не загрязненную органическими веществами.

Обратите внимание!

Параметры паровой и воздушной стерилизации контролируют с помощью максимальных термометров, которые размещаются в контрольных точках. Количество контрольных точек зависит от объема камеры стерилизатора. Параметры паровой стерилизации дополнительно контролируются при помощи мановакуумметров.

Химический контроль термической стерилизации осуществляют при каждом цикле работы с использованием специальных тест-индикаторов, необходимое количество и точки расположения которых зависят от вида аппаратуры и объема стерилизационной камеры.

Контроль стерилизации с помощью бактериологических методов (биотестов) должен осуществляться не реже 2 раз в год, а также после ввода в эксплуатацию и ремонта аппаратуры. Биотесты, содержащие некоторое количество жизнеспособных микроорганизмов, обладающих высокой резистентностью, помещают в контрольные точки стерилизационной камеры. При качественно проведенном процессе стерилизации микроорганизмы погибают. Вид применяемых биотестов зависит от типа стерилизационного оборудования.

Химическими методами проводят обеззараживание различных поверхностей, медицинской мебели, оборудования, жидких отходов, спецодежды и других объектов.

К сведению

При выборе химических дезинфектантов предпочтение следует отдавать средствам с широким спектром антимикробной активности.

Объекты, загрязненные кровью, необходимо дезинфицировать растворами, обладающими активностью в отношении возбудителей парентеральных инфекций.

Рабочие растворы дезсредств готовят в специально отведенных помещениях или в вытяжном шкафу. Контейнеры (емкости) с растворами маркируют, указывая название дезсредства и его назначение, концентрацию раствора, дату приготовления и дату конечной реализации.

Дезсредства, применяемые для проведения текущих и генеральных уборок, должны обладать моющими свойствами. Текущую уборку проводят 2 раза в день. Обрабатывают полы, мебель, оборудование, подоконники, двери.

Генеральные уборки проводят не реже 1 раза в месяц, в боксированных помещениях — не реже 1 раза в неделю.

Во время генеральных уборок моют и дезинфицируют стены на высоту до 2 м, пол, плинтусы, двери, окна, мебель, аппараты, приборы. Для «чистой» и «грязной» зон используют отдельный уборочный инвентарь, который должен быть промаркирован и использоваться строго по назначению.

После влажной уборки включают бактерицидные облучатели. Их следует эксплуатировать в соответствии с действующими методическими документами и инструкциями по применению конкретного оборудования.

Обратите внимание!

Если в течение дня нужно экстренно обработать небольшие по площади или труднодоступные поверхности, следует использовать готовые к применению формы дезсредств, которые имеют небольшое время экспозиции и выпускаются в виде спреев или дезинфицирующих салфеток.

Медицинские изделия и посуду дезинфицируют способом полного погружения в рабочий раствор дезинфицирующего средства. Разъемные изделия обеззараживают в разобранном виде, каналы и полости изделий заполняют дезинфицирующим раствором.

Особенности обращения с отходами лабораторий

Все отходы, образующиеся в «заразной» зоне лаборатории, считаются эпидемиологически опасными, т. е. относятся к классу Б, и должны подвергаться обеззараживанию.

Твердые отходы, которые образуются в «заразной» зоне лаборатории, собирают в одноразовые пакеты или контейнеры желтого цвета или имеющие желтую маркировку, подвергают дезинфекции химическими или физическими методами.

Жидкие отходы из «заразной» зоны запрещено сливать в канализационную сеть без предварительного обеззараживания. Чаще всего их смешивают с растворами дезсредств в пропорциях, указанных в инструкциях по применению конкретных дезинфектантов.

Лабораторную посуду с культурами микроорганизмов, как правило, обеззараживают в паровых стерилизаторах.

Важно!

Пробирки со сгустками крови обеззараживают с использованием дезинфицирующих растворов или с применением физических методов дезинфекции. Вытряхивать необеззараженные сгустки крови из пробирок запрещено.

При погружении в дезинфицирующий раствор пробирок со сгустками крови необходимо соблюдать осторожность. Пробирку берут анатомическим пинцетом так, чтобы одна его бранша вошла немного внутрь, и погружают ее в наклонном положении до полного заполнения раствором. При правильном погружении воздушные пузыри не образуются, пробирка опускается на дно.

Техника безопасности и ликвидация аварийных ситуаций

Помещения лаборатории должны быть оборудованы пожарной сигнализацией и обеспечены средствами пожаротушения в соответствии с требованиями пожарной безопасности.

Сотрудники диагностических лабораторий должны быть обеспечены спецодеждой соответствующего размера: медицинскими халатами и костюмами, шапочками, медицинской обувью и средствами индивидуальной защиты, в том числе перчатками и масками, респираторами.

Для работы в боксированных помещениях используют отдельный халат, доходящий до нижней трети голени, и тапочки.

Рабочая одежда и обувь должны быть индивидуальными, храниться отдельно от личной одежды. Смена рабочей одежды проводится по мере загрязнения, но не реже 1 раза в неделю. Стирать спецодежду следует централизованно. Перед сдачей в стирку защитную одежду обеззараживают.

В лабораториях не допускается применение материалов и средств личной гигиены, раздражающих кожу. После окончания работ с ПБА, при переходе из «заразной» зоны в чистую, а также после уборочных работ и проведения дезинфекции персонал лаборатории должен выполнять гигиеническую обработку рук, используя кожные антисептики. 

Важно!

На случай аварийных ситуаций, при которых создается угроза выделения ПБА в воздух рабочей зоны или есть риск заражения персонала, в лаборатории должен быть план ликвидации аварии и запас дезинфицирующих средств.

Объем мероприятий по ликвидации аварии зависит от характера выполняемой работы, вида и свойств ПБА, масштабов аварии.

Кроме того, в специально отведенном месте хранят аварийную аптечку, гидропульт, комплекты рабочей одежды для переодевания пострадавших и защитной одежды для сотрудников, ликвидирующих последствия аварии. Ответственным за комплектование аптечки и аварийной укладки является заведующий лабораторией.

Состав аварийной аптечки:

1. Спирт этиловый 70%-ный — 2 флакона по 100 мл.

2. Спиртовой раствор йода 5%-ный — 1 флакон.

3. Раствор борной кислоты 1%-ный — 1 флакон.

4. Нашатырный спирт — 1 флакон.

5. Бинт марлевый медицинский стерильный (5 м × 10 см) — 2 шт.

6. Лейкопластырь бактерицидный (не менее 1,9 см × 7,2 см) — 3 шт.

7. Салфетка марлевая медицинская стерильная (не менее 16 см × 14 см, № 10) — 1 уп.

8. Ножницы с закругленными браншами.

При аварии во время работы на центрифуге крышку медленно открывают только спустя 30–40 минут, чтобы сформировавшийся аэрозоль успел осесть. Центрифужные стаканы и разбитое стекло помещают в дезинфицирующий раствор, поверхность крышки, внутренние части центрифуги, ее наружную поверхность дезинфицируют (после отключения ее от электросети).

О каждом случае аварийной ситуации руководитель лаборатории обязан сообщить комиссии по контролю соблюдения требований биологической безопасности, а также руководителю медорганизации.

Не реже 1 раза в год в лаборатории должны проводиться тренировочные учения по ликвидации аварий.

Допуск персонала к работе с ПБА

Допуск персонала к работе с ПБА III–IV групп патогенности, а также допуск инженерно-технического персонала к обслуживанию лабораторного оборудования должен осуществляться на основании приказа главного врача. Приказ издается не реже одного раза в два года, корректируется по мере необходимости.

В лабораториях медорганизаций работу с ПБА могут выполнять специалисты не моложе 18 лет с высшим и средним медицинским или биологическим образованием, прошедшие необходимую профессиональную подготовку.

Лица, имеющие медицинские противопоказания к вакцинации, лечению специфическими препаратами, использованию средств индивидуальной защиты, к работам с ПБА не допускаются.

Не реже 1 раза в год медицинский персонал, работающий с ПБА, должен проходить инструктаж по соблюдению требований биологической безопасности. Инженерно-технический персонал, дезинфекторы и санитарки лаборатории также должны проходить вводные и периодические инструктажи по биологической безопасности.

При приеме на работу сотрудников лаборатории направляют на предварительный медицинский осмотр для выявления противопоказаний с учетом специфики трудовой деятельности[1].

Все сотрудники, которые привлекаются к работам с ПБА, должны быть привиты в соответствии с календарем профилактических прививок и календарем прививок по эпидемическим показаниям.

К работе с паровыми стерилизаторами (автоклавами) могут быть допущены лица, обученные, аттестованные и имеющие удостоверение на право обслуживания сосудов, работающих под давлением.

Организация работы комиссии по биологической безопасности

Для контроля за соблюдением мер биологической безопасности при работе с ПБА в медорганизации создается специальная комиссия. В ее состав, как правило, включают заведующего лабораторией, врача-эпидемиолога или его помощника, инженера по охране труда и других заинтересованных специалистов.

Задачи комиссии по биологической безопасности:

• организация и проведение постоянного контроля за соблюдением регламентированного порядка обеспечения биологической безопасности лаборатории;
• разработка комплекса мер по совершенствованию биологической безопасности;
• организация и проведение мероприятий, направленных на предупреждение аварийных ситуаций при работе с ПБА и ликвидацию их последствий;
• контроль за подготовленностью сотрудников к работе с ПБА и организация наблюдения за состоянием их здоровья.

Заседания комиссии проводятся не реже 2 раз в год. Решения комиссии доводятся до сведения руководителя медорганизации.

7. Применение ультрафиолетовых бактерицидных установок для обеззараживания воздуха в помещениях

7.1. Длительность эффективного облучения tэ воздуха в помещении во время непрерывной работы бактерицидной установки, при которой достигается заданный уровень бактерицидной эффективности, должна находиться для закрытых облучателей в пределах 1 — 2 ч, а для открытых и комбинированных — 0,25 — 0,5 ч и для приточно-вытяжной вентиляции  1 ч (или при кратности воздухообмена Кр  1 ч-1). При этом расчет бактерицидной установки производится с учетом минимального значения длительности эффективного облучения tэ, т.е. для открытых и комбинированных облучателей 0,25 ч, а для закрытых облучателей 1 ч.
7.2. Закрытые облучатели и приточно-вытяжная вентиляция в присутствии людей должны работать непрерывно в течение всего рабочего времени.
7.3. Бактерицидные установки с открытыми и комбинированными облучателями могут использоваться в повторно-кратковременном режиме тогда, когда на время облучения (tэ) в пределах 0,25 — 0,5 ч люди из помещения удаляются. При этом повторные сеансы облучения должны проводиться через каждые 2 ч в течение рабочего дня.
7.4. В помещениях первой категории рекомендуется использовать бактерицидные установки, состоящие из открытых или комбинированных и закрытых облучателей или приточно-вытяжной вентиляции и открытых или комбинированных облучателей. При этом открытые и комбинированные облучатели включаются только в отсутствии людей на время (tэ) в пределах 0,25 — 0,5 ч на период предоперационной подготовки помещения. Это позволяет сократить время и повысить уровень обеззараживания воздуха помещений с повышенными эпидемиологическими требованиями.
7.5. Бактерицидные установки с приточно-вытяжной вентиляцией и дополнительными закрытыми облучателями применяются тогда, когда существующая приточно-вытяжная вентиляция обеспечивает заданный уровень бактерицидной эффективности за время tэ более 1 ч.
7.6. При применении приточно-вытяжной вентиляции бактерицидные лампы размещают в выходной камере после пылеулавливающих фильтров.

11. Санитарное содержание помещений, оборудования, инвентаря
11.1 Все помещения, оборудование, медицинский и другой инвентарь должны содержаться в чистоте. Влажная уборка помещений (обработка полов, мебели, оборудования, подоконников, дверей) должна осуществляться не менее 2 раз в сутки, с использованием моющих и дезинфицирующих средств, разрешенных к использованию в установленном порядке.

11.7 Генеральная уборка помещений палатных отделений и других функциональных помещений и кабинетов должна проводиться по графику не реже 1 раза в месяц, с обработкой стен, полов, оборудования, инвентаря, светильников.
11.8 Генеральная уборка операционного блока, перевязочных, родильных залов, процедурных, манипуляционных, стерилизационных, и других помещений с асептическим режимом проводится один раз в неделю. В день проведения генеральной уборки в оперблоке плановые операции не проводятся.
Вне графика генеральную уборку проводят в случае получения неудовлетворительных результатов микробной обсемененности внешней среды и по эпидемиологическим показаниям.

11.9 При проведении генеральной уборки дезинфицирующий раствор наносят на стены путем орошения или их протирания на высоту не менее двух метров (в операционных блоках  на всю высоту стен), окна, подоконники, двери, мебель и оборудование. По окончании времени обеззараживания (персонал должен провести смену спецодежды) все поверхности отмывают чистыми тканевыми салфетками, смоченными водопроводной (питьевой) водой, а затем проводят обеззараживание воздуха в помещении.

Дез. средствами пользуются согласно методическим указаниям по применению конкретного дез. средства.

Памятка для сотрудников КДЛ

Клинико-диагностические, микробиологические и другие диагностические лаборатории должны размещаться в изолированных непроходных отсеках зданий. Размещение лабораторий, работающих с микроорганизмами III -IV группы патогенности, в жилых зданиях не допускается. На входной двери лаборатории, работающей с микроорганизмами III -IV группы патогенности, должны быть обозначены название (номер) лаборатории и международный знак «Биологическая опасность».

Размещение и состав помещений микробиологической лаборатории (отделения) определяется с учетом требований санитарных правил по безопасности работы с микроорганизмами III -IV групп патогенности (опасности) и возбудителей паразитарных болезней.

Лаборантская (в т.ч. гематологическая, биохимическая, эмбриологическая, гистологическая и др.)- 6 м ²на каждое рабочее место, но не менее 12м²;

Помещение приема и регистрации биоматериала для лабораторных исследований- 8 м²;

Помещение взятия проб капиллярной крови — 4 м²на каждое рабочее место, но не менее 9 м²

Лаборатория срочных анализов- 12 м²

Автоклавная для обеззараживания-12 м²
Лаборатория должна быть обеспечена холодным и горячим водоснабжением, канализацией, электричеством, отоплением и вентиляцией. На случай выхода из строя или проведения профилактического ремонта системы горячего водоснабжения в качестве резервного источника устанавливаюся водонагревательные устройства.

Все помещения лаборатории должны иметь естественное и искусственное освещение в соответствии с требованиями действующих нормативных документов.

Объемно-планировочные решения и размещение оборудования должны обеспечивать поточность движения исследуемого материала, персонала и выполнение требований санитарных правил.

Лаборатории должны иметь набор рабочих и вспомогательных помещений (комнат). Набор помещений и их оснащение оборудованием могут варьировать в зависимости от конкретных целей и задач лаборатории.

Помещения лабораторий разделяют на «заразную» зону, где осуществляются манипуляции с ПБА III — IV групп и их хранение, и «чистую» зону, где не проводят работы с микроорганизмами и их хранение.

Внутренняя отделка помещений должна быть выполнена в соответствии с их функциональным назначением и гигиеническими нормативами. Поверхность пола, стен, потолка в лабораторных помещениях должна быть гладкой, без щелей, устойчивой к многократному действию моющих и дезинфицирующих средств. Полы должны быть не скользкими, иметь гидроизоляцию.

Лабораторное оборудование и мебель должны быть гладкими, без острых краев и шероховатостей и иметь покрытие, устойчивое к действию моющих и дезинфицирующих средств.

В лабораторных помещениях должна быть предусмотрена защита рабочих столов от попадания прямого солнечного света. Для этих целей могут быть использованы светозащитная пленка, жалюзи из материала, устойчивого к воздействию дезинфицирующих растворов.

Помещения «заразной» зоны должны быть оборудованы бактерицидными облучателями для обеззараживания воздуха и поверхностей в соответствии с нормативами.

Для обеззараживания воздуха в помещениях с асептическим режимом следует применять разрешенные для этой цели оборудование и/или химические средства.

Технология обработки и режимы обеззараживания воздуха изложены в соответствующих нормативно-методических документах и инструкциях по применению конкретного дезинфекционного оборудования и дезинфицирующих средств.

С целью снижения обсемененности воздуха до безопасного уровня применяются следующие технологии:

— воздействие ультрафиолетовым излучением с помощью открытых и комбинированных бактерицидных облучателей, применяемых в отсутствии людей, и закрытых облучателей, в том числе рециркуляторов, позволяющих проводить обеззараживание воздуха в присутствии людей, необходимое число облучателей для каждого помещения определяют расчетным путем согласно действующим нормам;

— воздействие аэрозолями дезинфицирующих средств в отсутствие людей с помощью специальной распыливающей аппаратуры (генераторы аэрозолей) при проведении дезинфекции по типу заключительной и при проведении генеральных уборок;

— применение бактериальных фильтров, в том числе электрофильтров.

Длительность эффективного облучения   воздуха в помещении во время непрерывной работы бактерицидной установки, при которой достигается заданный уровень бактерицидной эффективности, должна находиться для закрытых облучателей в пределах 1 — 2 ч, а для открытых и комбинированных — 0,25 — 0,5 ч.

Закрытые облучатели и приточно-вытяжная вентиляция в присутствии людей должны работать непрерывно в течение всего рабочего времени.

Бактерицидные установки с открытыми и комбинированными облучателями могут использоваться в повторно-кратковременном режиме тогда, когда на время облучения в пределах 0,25 — 0,5 ч люди из помещения удаляются. При этом повторные сеансы облучения должны проводиться через каждые 2 ч в течение рабочего дня. На помещения с бактерицидными установками должен быть оформлен акт ввода их в эксплуатацию и заведен журнал регистрации и контроля.
Приборы, оборудование и средства измерения в лаборатории должны быть аттестованы, технически исправны, проходить метрологический контроль в установленные сроки и иметь технический паспорт. Количество оборудования в лаборатории определяется объемами и характером проводимых и планируемых (согласно номенклатуре) паразитологических исследований.

Боксированные помещения, микробиологические комнаты, помещения с аэрозольными камерами (установками) должны быть оборудованы автономными системами приточно-вытяжной вентиляции с механическим побуждением. Указанные системы оснащаются фильтрами тонкой очистки на выходе, проверяемыми на защитную эффективность.

В отдельных случаях для создания асептических условий в помещениях фильтрами тонкой очистки могут оснащаться и приточные системы вентиляции.

Эксплуатацию систем приточно-вытяжной вентиляции лабораторий (лабораторных зданий) должны осуществлять в соответствии с инструкцией, составленной на основании требований соответствующих нормативных документов.

Смена фильтров должна проводиться при нарушении параметров депрессионного режима (изменение скорости воздушных потоков, кратности воздухообмена), при повреждении фильтра (снижение сопротивления, увеличение коэффициента проскока), при повышении сопротивления фильтров на 50% и одновременно уменьшении скорости воздушного потока в боксирующих устройствах.

В условиях жаркого климата разрешается установка кондиционеров в рабочих комнатах и боксах при условии их выключения на время работы с ПБА (патогенные биологические агенты).

Транспортировка и хранение биоматериалов.
Доставка материала в лаборатории из сторонних организаций осуществляется через самостоятельный вход.

Диагностические лаборатории, проводящие исследования с ПБА III — IV групп, должны иметь 2 входа: один — для сотрудников, другой — для доставки материала на исследование. Допускается получение материала через передаточное окно.

Доставка в лабораторию материала для исследования осуществляется в контейнерах, биксах или в сумках-холодильниках. Доставляемые емкости с жидкими материалами должны быть закрыты пробками, исключающими выливание содержимого во время транспортирования. Дно контейнеров, содержащих емкости с ПБА, должно быть покрыто адсорбирующим материалом (марлевая салфетка, ткань, вата и пр.). Не допускается доставка материала в хозяйственных сумках, чемоданах, портфелях и других предметах личного пользования.

Прием и разборка доставленного материала (проб) должны проводиться с соблюдением мер предосторожности. Емкости с ПБА должны помещаться на поднос или лоток, покрытый многослойной марлевой салфеткой, смоченной дезинфицирующим раствором. Персонал должен использовать маску и резиновые перчатки.

При транспортировке биоматериал помещают в пробирки, закрывающиеся резиновыми пробками, сопроводительную документацию – в упаковку, исключающую возможность её загрязнения биоматериалом. Бланки направлений помещать в пробирку с кровью запрещается.

Транспортировка биоматериала осуществляются в закрытых контейнерах, подвергающихся дезинфекционной обработке.

При открывании пробок бутылок, флаконов, пробирок с кровью, плазмой или другими секретами следует не допускать разбрызгивания содержимого.

При хранении потенциально инфицированного материала в холодильнике необходимо поместить биоматериал в полиэтиленовый пакет.

В случае подтверждения зараженности биоматериала размораживание холодильника совмещают с его дезинфекцией.

При аварии (разбрызгивании зараженного материала и т.д.) помещение, где произошла авария, тщательно дезинфицируют и предпринимают все необходимые действия в соответствии с требованиями III раздела санитарных правил по безопасности работы с микроорганизмами III — IV групп патогенности (опасности) и возбудителей паразитарных болезней.

Объём и вид дезинфекции определяются руководителем клинико-диагностической лаборатории.

Проведение работ в лаборатории

Сотрудники клинико-диагностических лабораторий подвергаются риску заражения СПИД, вирусным гепатитом, кишечными инфекциями и другими инфекционными заболеваниями. При этом следует иметь в виду, что в качестве главного фактора распространения выше названных заболеваний выступает кровь, мокрота, сперма, моча и другие секреты и экскреты организма человека. В клинико-диагностических лабораториях кровь и биологические жидкости должны считаться потенциально инфицированными.

Ответственность за организацию и соблюдение противоэпидемического режима при работе с потенциально опасным материалом возлагается на руководителя клинико-диагностической лаборатории.

В организации, работающей с ПБА, создается комиссия по контролю соблюдения требований биологической безопасности.

Работу с ПБА III—IV групп патогенности выполняют специалисты не моложе 18 лет с высшим и средним медицинским, биологическим, ветеринарным и иным образованием в соответствии с принятым каждым ведомством порядком замещения должностей, окончившие соответствующие курсы специализации с освоением методов безопасной работы с ПБА III—IV групп. Персонал лаборатории допускается к работе после проведения инструктажа по соблюдению требований биологической безопасности, Инструктаж среднего и младшего медицинского персонала проводится ответственным за технику безопасности не реже одного раза в квартал.

Медицинскому персоналу клинико-диагностических лабораторий следует избегать контакта кожи и слизистых оболочек с кровью и другими биологическими жидкостями, для чего необходимо:

• Работать в медицинских халатах, шапочках, сменной обуви, а при угрозе забрызгивания кровью или другими биологическими жидкостями, в масках, очках, клеенчатых фартуках.
• Перед использованием посуда, пипетки, оборудование, шприцы и т.д. должны быть проверены на целостность и исправность
• При пипетировании необходимо пользоваться только резиновыми грушами или автоматическими устройствами.
• Бактериологическая петля должна быть замкнута в непрерывное кольцо и иметь плечо длиной не более 6 см. Допускается использование одноразовых промышленно изготовленных петель с большей длиной плеча.
• Работать с исследуемым материалом в резиновых перчатках, все повреждения кожи на руках должны быть закрыты лейкопластырем или напальчником. Избегать уколов и порезов.
• Проводить разборку, мойку, прополаскивание лабораторного инструментария, посуды после предварительной дезинфекции в резиновых перчатках.
• Поверхность рабочих столов в конце каждого рабочего дня, а в случае загрязнения биологическим материалом немедленно, подвергается дезинфекции
• Сотрудники лабораторий должны быть обеспечены рабочей одеждой: медицинскими халатами, пижамами (комбинезонами), шапочками, сменной обувью и средствами индивидуальной защиты в зависимости от характера выполняемых работ и в соответствии с действующими нормами.
• Рабочая одежда и обувь должны быть индивидуальными, соответствовать размерам работающих и храниться отдельно от личной одежды.
• При работе с кровью дополнительно используется защитный экран или очки.
• Работа с использованием вредных химических веществ (фиксирование материала, розлив формалина, концентрированных кислот, приготовление реактивов, прокаливание выжигание, измельчение) должны проводиться в вытяжном шкафу.
• Летучие химические вещества хранятся в отдалении от нагревательных приборов и открытого огня. Хранение ядовитых веществ осуществляется в специальных кладовых, в металлических шкафах или сейфах. Кислоты и щелочи хранятся в стеклянной закрытой посуде на нижних полках шкафов отдельно от реактивов и красок. При разбавлении концентрированных кислот во избежание разбрызгивания кислоту добавляют в воду (а не наоборот). Для розлива из емкостей объемом 10-20 л в мелкую тару применяются средства малой механизации (опрокидыватели, сифоны).
• Смена рабочей одежды должна проводиться по мере загрязнения, но не реже 1 раза в неделю.
• Запрещается принимать пищу, пить, курить и пользоваться косметикой на рабочем месте. Прием посетителей, хранение пищевых продуктов, прием пищи разрешается только в специально отведенных местах в «чистой» зоне лаборатории.

В «заразной» зоне лаборатории не допускается:

• оставлять после окончания работы на рабочих местах нефиксированные мазки или посуду с ПБА;
• пипетировать ртом, переливать жидкий инфекционный материал через край сосуда (пробирки, колбы, флакона и др.);
• хранить верхнюю одежду, головные уборы, обувь, зонты, хозяйственные сумки, косметику и т.п., а также продукты питания;
• курить, пить воду;
• оставлять рабочее место во время выполнения любого вида работ с ПБА;
• сливать жидкие отходы (инфицированные жидкости, исследуемый материал и т.д.) в канализацию без предварительного обеззараживания;
• удалять необеззараженные сгустки крови из пробирок, флаконов вытряхиванием.

Допускается в одном и том же помещении поочередное проведение диагностических и экспериментальных исследований после проведения дезинфекции помещения, приборов и оборудования.

При приеме на работу, связанную с использованием ПБА III — IV групп, персонал должен проходить предварительный медицинский осмотр с целью выявления медицинских противопоказаний к вакцинопрофилактике, лечению специфическими препаратами и применению средств индивидуальной защиты. Объем и порядок проведения медосмотра определяются действующими нормативными документами.

У сотрудников лабораторий, проводящих серологические исследования на ВИЧ-инфекцию и гепатиты B и C, ежегодно проводятся контрольные исследования на наличие соответствующих антигенов (антител) в сыворотке крови.

Сотрудники, работающие с кровью (сывороткой, плазмой крови), должны быть иммунизированы против вирусных гепатитов, а выполняющие исследования на энтеровирусы — против полиомиелита.

Все сотрудники должны проходить периодические медицинские осмотры в соответствии с нормативными документами.
Дезинфекция лабораторного инструментария, посуды, спецодежды, биоматериала, оборудования. 

Методы и средства обеззараживания определяются в каждом отдельном случае в зависимости от характера обеззараживаемого материала.

При проведении дезинфекции предпочтение следует отдавать физическому методу вследствие его надежности и безопасности для персонала.

Дезинфекции способом кипячения подвергают посуду, в том числе лабораторную, белье, защитную одежду персонала, перчатки резиновые, резиновые шланги, пробки, груши для пипетирования зараженного материала, инструменты после вскрытия лабораторных животных, жидкие отходы, смывные воды, уборочный материал, и др.

Паровым методом обеззараживают посуду лабораторную, защитную одежду персонала, бактериологические посевы, воздушные бактериальные фильтры, жидкие отходы, смывные воды.

Дезинфекции воздушным методом подвергают лабораторную посуду из стекла, металлов, силиконовой резины без упаковки. Этим методом дезинфицируют посуду, не загрязненную органическими веществами.

С использованием дезинфицирующих средств проводят обеззараживание, поверхностей в помещениях, мебели, оборудования, защитной одежды персонала, белья, перчаток резиновых, очков, обуви, посуды лабораторной (пипетки, пробирки, колбы, чашки Петри, предметные стекла, гребенки для сушки культур, шприцы и др.), инструментов, воздушных фильтров, жидких отходов, смывных вод, санитарно-технического оборудования, уборочного материала.

Для дезинфекции применяют средства, содержащие в качестве действующих веществ (ДВ) активный кислород (перекисные соединения и др.), катионные поверхностно-активные вещества (КПАВ), хлорактивные соединения, альдегиды, спирты (этанол, пропанол и др.) чаще всего в виде многокомпонентных рецептур, содержащих одно или несколько ДВ и функциональные добавки (антикоррозионные, дезодорирующие, моющие и др.).

Режимы дезинфекции различных объектов, контаминированных возбудителями III — IV групп патогенности (бактериями, включая микобактерии, вирусами, грибами и спорами бацилл), дезинфицирующими средствами приведены в инструкциях по их применению.

Выбор дезинфицирующего средства определяется спецификой объектов, подлежащих обеззараживанию, и целевым назначением средства.

При проведении текущей и генеральной уборок с применением растворов ДС поверхности в помещениях, приборов, оборудования и др. дезинфицируют способом протирания тканевой салфеткой или ветошью, смоченными раствором ДС. Для этих целей целесообразно использовать дезинфицирующие средства с моющим эффектом. При необходимости экстренной обработки в течение рабочего дня небольших по площади или труднодоступных поверхностей возможно применение готовых форм ДС, например, на основе спиртов, для которых характерно короткое время воздействия, с помощью ручных распылителей или способом протирания растворами ДС, нанесенными на ветошь, или готовыми к применению дезинфицирующими салфетками. Применение ДС с моющими свойствами позволяет объединить обеззараживание объекта с его мойкой, поэтому при проведении текущих и генеральных уборок применяют ДС, обладающие моющим действием.

Для дезинфекции выделений (фекалии, мокрота и др.) и посуды из-под выделений используют в основном хлорактивные средства.

Для дезинфекции спецодежды и белья используют средства, не содержащие альдегидов, спиртов.

Для дезинфекции изделий медицинского назначения и лабораторной посуды применяются средства на основе альдегидов, катионных поверхностно-активных веществ, перекиси водорода, хлорсодержащие средства. Дезинфекцию изделий и посуды проводят способом погружения в раствор дезинфицирующего средства. Разъемные изделия дезинфицируют в разобранном виде. Каналы и полости изделий заполняют дезинфицирующим раствором.

Обеззараживание медицинских отходов классов Б и В (белье, маски, спецодежда, салфетки, изделия медицинского назначения однократного применения и др.) перед утилизацией осуществляют в местах их образования способом погружения в растворы ДС в соответствии с санитарными правилами и нормами «Правила сбора, хранения и удаления отходов лечебно-профилактических учреждений». Для дезинфекции медицинских отходов применяют химический и физический методы обеззараживания по режимам, обеспечивающим гибель соответствующих возбудителей. Дезинфекция выделений, крови, мокроты и др. проводится также сухими хлорактивными ДС (хлорная известь, кальция гипохлорит нейтральный и пр.). Возможно одновременное обеззараживание и утилизация медицинских отходов с использованием установок, разрешенных к применению в установленном порядке.

В лаборатории должен храниться как минимум недельный запас дезинфицирующих средств.

Дезинфицирующие растворы готовят в специально отведенных помещениях или вытяжном шкафу. На емкости с дезинфицирующим раствором должны быть указаны его название, концентрация и дата приготовления.

Автоклавирование проводится персоналом, имеющим свидетельство об окончании специальных курсов.

Контроль работы паровых и воздушных стерилизаторов, используемых для обеззараживания материалов, проводят согласно действующим инструктивно-распорядительным и методическим документам физическим, химическим и биологическим методами.

Бактериологический контроль работы стерилизаторов проводят после монтажа и ремонта аппаратуры, а также в процессе его эксплуатации (плановый — 2 раза в год и при получении неудовлетворительных результатов контроля).

Перенос материала для обеззараживания внутри подразделения проводится в специальных емкостях (баках, ведрах, биксах с крышками).

Обеззараживание материала и дезинфекция помещений.

Банки с фекалиями, желчью, мокротой и т. п. помещают в эмалированные кюветы или на отдельные столы стационарные или передвижные (с пластиковым или другим легко поддающимся дезинфекции покрытием).

Пробирки с кровью устанавливают в штативы, помещенные в эмалированные, пластиковые кюветы.

При отсутствии пластикового покрытия на столах для микроскопии используют легко поддающиеся дезинфекции стеклянные, металлические, пластиковые пластины или эмалированные кюветы, где раскладывают мазки, препараты, материал для исследования. 

Отработанные предметные стекла, пипетки, пробки, пробирки, стеклянные палочки, химические стаканчики и т. п. складывают в течение рабочего дня в емкости с дезинфицирующим раствором до полного вертикального погружения для предварительного обеззараживания.

Заключительное обеззараживание лабораторной посуды проводится путем кипячения в воде (с момента закипания не менее 30 мин) с добавлением хозяйственного мыла или жидкого моющего средства. При соответствующих условиях можно использовать автоклавирование. После дезинфекции посуда допускается для мытья и стерилизации.

Ватно-марлевый материал, бумажные фильтры и разовые деревянные палочки уничтожаются путем сжигания или выброса в контейнер для мусора после экспозиции в одном из дезинфицирующих растворов, или предварительно засыпаются сухим порошком хлорной извести или хлорамина.

Пробы фекалий, мокроты, желчи, мочи засыпаются сухой хлорной известью или белильной термостойкой известью, или хлорамином перед выбросом в контейнеры или сливом в общую канализационную систему (при соответствующих условиях для обезвреживания используют автоклавирование).

Полистироловые планшеты, наконечники, микропробирки, пробирки, пипетки и др., используемые при работе с кровью или сывороткой крови, обеззараживаются в 6 %- ном растворе перекиси водорода с экспозицией 3 ч в термостате при 50 °С. После этого промывают под проточной водой, затем промывают 3—5 мин в дистиллированной воде и высушивают в термостате при 50 °С в течение 15 мин.

Сгустки крови и сыворотку крови перед утилизацией в общую канализационную сеть обезвреживают только с применением дезинфицирующих растворов (в соответствии с действующими инструкциями по обеззараживанию).

Рабочие поверхности лабораторных столов обеззараживают.

Дезинфекционная обработка оборудования (центрифуги, микроскопы, холодильники и др.) проводится раствором 70 % спирта или с применением соответствующих дезсредств. По окончании работ медицинский персонал должен обработать руки дезинфицирующим раствором или 70% спиртом с последующим мытьем с мылом. Допускается использование кожных антисептиков в соответствии с инструкциями по применению.
Предстерилизационная очистка.

После дезинфекции лабораторный инструментарий, соприкасающийся с раневой поверхностью или слизистыми оболочками обследуемого подлежит обязательной предстерилизационной очистке и стерилизации. Предстерилизационную очистку проводят с применением моющих растворов.

Качество предстерилизационной очистки изделий оценивают на наличие крови путём постановки бензидиновой или амидопириновой проб; на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющего средства ставится фенолфталеиновая проба.

Самоконтроль в клинико-диагностических лабораториях проводится ежедневно, контролю подвергают не менее 1% от одновременно обработанных изделий одного наименования, но не менее 3-5 единиц.

При положительной пробе на кровь или моющее средство всю группу контролируемых изделий подвергают повторной обработке до получения отрицательных результатов.

  Стерилизация.

После дезинфекции и предстерилизационной очистки проводят стерилизацию игл, шприцев, пробирок, пипеток, стеклянных палочек, стекол, меланжеров и т.д.

Санитарное содержание помещений.

 Все помещения, оборудование, инвентарь должные содержаться в идеальной чистоте.

Текущая уборка помещений проводится ежедневно влажным способом после окончания рабочего дня: в «чистой» зоне лаборатории с применением моющих средств, в «заразной» зоне с применением дезинфектантов. При дезинфекции объектов, загрязненных кровью и другими биологическими субстратами, представляющими опасность в распространении парентеральных вирусных гепатитов и ВИЧ-инфекции, следует руководствоваться действующими инструктивно-методическими документами и применять ДС по противовирусному режиму.

В боксовых помещениях проводится еженедельная генеральная уборка помещений с применением дезинфицирующих средств. Поверхности в помещениях, аппараты, приборы протирают дезинфицирующим раствором, стены обрабатывают на высоту до 2 метров. После влажной уборки включают бактерицидные лампы. Эксплуатация бактерицидных облучателей должна осуществляться в соответствии с действующими методическими документами по применению бактерицидных ламп для обеззараживания воздуха и поверхностей в помещениях, утвержденными в установленном порядке. На помещения с бактерицидными установками должен быть оформлен акт ввода их в эксплуатацию и заведен журнал регистрации и контроля.

Стеклянные поверхности бактерицидных ламп следует протирать в выключенном положении ветошью, смоченной спиртом, не реже 1 раза в неделю.

Уборочный инвентарь должен быть промаркирован отдельно для «чистой» и «заразной» зон. Перенос его из одной зоны в другую не допускается.

Влажная уборка помещений должна осуществляться не менее одного раза в сутки, а при необходимости чаще с применением моющих средств и дезинфекции.

Один раз в месяц в помещениях, где проводится работа с кровью, сывороткой делают генеральную уборку с использованием 3% раствора хлорамина, хлорной извести, извести белильной термостойкой.

Во время генеральной уборки тщательно моются стены, оборудование, мебель, проводится очистка полов от наслоений, пятен и т.д.

Генеральные уборки проводятся по утвержденному графику.

Помещения лабораторий должны быть непроницаемы для грызунов и насекомых.

Лабораторные помещения должны быть оборудованы пожарной сигнализацией и обеспечены средствами пожаротушения в соответствии с требованиями пожарной безопасности.

Порядок действий по ликвидации аварий

На случай аварии, при которой создается реальная или потенциальная возможность выделения патогенного биологического агента в воздух производственной зоны, среду обитания человека и заражения персонала, в подразделениях, где ведут работы с ПБА, должен быть план ликвидации аварии, запас дезинфицирующих средств, активных в отношении возбудителей, с которыми проводят исследования.

В состав аварийной аптечки входит: спирт этиловый 70% (два флакона по 100 мл), 2 — 3 навески перманганата калия для приготовления 0,05% раствора (0,0125 г перманганата калия + 25 мл воды), стерильная дистиллированная вода, 5% настойка йода, ножницы с закругленными браншами, перевязочные средства (вата, бинты и пр.), жгут и нашатырный спирт.

Кроме выше перечисленного, в аптечке вирусологической лаборатории должны быть 1% раствор борной кислоты, интерферон или индуктор интерферона; в аптечке микологической лаборатории — 1% раствор борной кислоты или навески для приготовления раствора (0,25 г борной кислоты + 25 мл воды).

В случае загрязнения кожных покровов кровью или другими биологическими жидкостями следует немедленно обработать их в течение 2-х минут тампоном, обильно смоченным 70⁰ спиртом, вымыть под проточной водой с мылом и вытереть индивидуальным полотенцем. При загрязнении перчаток кровью их протирают тампоном, смоченным 3% раствором хлорамина, 6% раствором перекиси водорода.

При подозрении попадания крови на слизистые оболочки, их немедленно обрабатывают струей воды, 1% раствором борной кислоты или вводят несколько капель азотнокислого серебра; нос обрабатывают 1% раствором протаргола; рот и горло прополаскивают 70⁰ спиртом или 1% раствором борной кислоты или 0,05% раствором марганцево-кислого калия.

Приказом министерства здравоохранения Саратовской области от 2 июля 2013г № 654 «О мероприятиях по предупреждению профессиональных заражений ВИЧ инфекцией медицинского персонала учреждений здравоохранения области» предусмотрен следующий состав аварийной аптеки и мероприятия:

Рекомендуемый перечень медикаментов, входящих в аптечку для оказания первой

медицинской помощи

1. Йод 5 % спиртовой раствор 1флакон.

2. Спирт этиловый 70 % 100,0мл.

3. Пластырь бактерицидный 1- 2шт. на одного сотрудника режимного кабинета.

4. Салфетка антисептическая для инъекций — 2шт. на одного сотрудника режимного

кабинета для обработки места укола.

5. Напалечники 1-2шт. на одного сотрудника режимного кабинета.

Кроме выше перечисленного, в аптечке вирусологической лаборатории должны быть 1 %

раствор борной кислоты, интерферон или индуктор интерферона.

Аптечка и инструктивно-методическая документация должны храниться в легкодоступном месте. Контроль правильности хранения и пополнения аптечки возлагается на заведующих отделениями или назначенных ими лиц.

Действия медицинского работника при аварийных ситуациях

При возникновении аварийной ситуации необходимо сразу же оказать пострадавшему

первую медицинскую помощь.

В случае порезов и уколов кожи:

Снять перчатки (при сильном загрязнении перчаток биологическим материалом перед

снятием перчатки обработать дезинфицирующим средством), руки обработать 70 %

спиртом, далее вымыть с мылом под проточной водой, смазать ранку 5 % спиртовым

раствором йода.

При попадании крови или других биологических жидкостей на кожные покровы:

Обработать кожу 70 % спиртом, обмыть водой с мылом и повторно обработать 70 %

спиртом.

При попадании крови и других биологических жидкостей пациента на слизистую глаз, носа и рта:

Ротовую полость промыть большим количеством воды и прополоскать 70 % раствором

этилового спирта; слизистую оболочку носа и глаза обильно промывают водой (не тереть).

При попадании крови и других биологических жидкостей пациента на халат, одежду:

снять

рабочую одежду и погрузить в дезинфицирующий раствор;

кожу рук и другие участки тела под загрязненной одеждой протереть 70 % спиртом;

снять и обеззаразить перчатки.

Обувь обрабатывают двукратным протиранием ветошью, смоченной в растворе одного из

дезинфицирующих средств.

При попадании биологического материала на пол, стены, мебель, оборудование и

другие окружающие предметы: залить загрязненное место любым дезинфицирующим

раствором по режиму вирусных гепатитов.

При аварии во время работы на центрифуге:

крышку медленно открывают только через 30-40мин. (после оседания аэрозоля). Центрифужные стаканы и разбитое стекло помещают в дезинфицирующий раствор, поверхность крышки, внутренние части центрифуги, ее наружную поверхность дезинфицируют. Дезинфекция центрифуги проводится после отключения ее от электросети. Мероприятия проводятся в средствах индивидуальной защиты (маска, очки, перчатки, халат, шапочка). В помещении, где произошла авария, проводится заключительная дезинфекция.

О несчастном случае (порез, прокол, попадание биоматериала на слизистые, авария на

центрифуге) пострадавший медицинский работник должен сразу же сообщить

ответственному за осуществление мероприятий по профилактике ВИЧинфекции

и инженеру по охране труда учреждения. Осуществить запись в журнале регистрации аварийных ситуаций.

Памятка составлена в соответствии с действующими нормативами:

• ОСТ 42-21-2-85 «Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства и режимы»
• Приказ № 408 от 12 июля 1989 г. «О мерах по снижению заболеваемости вирусным гепатитом в стране»,
• СанПиН 2.1.3.2630-10 «Санитарные требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность»
• СП 1.1.1058-01″Организация и проведение производственного контроля за соблюдением санитарных правил и выполнением санитарно-противоэпидемических (профилактических) мероприятий».
• СП 1.3.2322-08«Безопасность работы с микроорганизмами III-IV групп патогенности(опасности)и возбудителями паразитарных заболеваний».
• Р 3.5.1904-04 «Использование ультрафиолетового бактерицидного излучения для обеззараживания воздуха в помещениях».
• Приказ министерства здравоохранения Саратовской области от 2 июля 2013г № 654 «О мероприятиях по предупреждению профессиональных заражений ВИЧ инфекцией медицинского персонала учреждений здравоохранения области».